В даний час теплична галузь переживає глобальні зміни в плані нових технологій та інновацій. Модернізуються конструкції, використовуються сучасні тепличні комплекси з додатковим штучним освітленням, удосконалюються методи вирощування овочевих культур. Яскраво простежується тенденція до збільшення кількості площ вирощування томатів з технологією штучного досвічування, де для якісного запилення неможливо обійтись без джмелів. Купуючи нову партію джмелів, важливо бути впевненим, що кожен вулик забезпечить максимально ефективне запилення в теплиці.
Перше, на що варто звернути увагу при перевірці вуликів – це якість джмелиної сім’ї. Виділяють наступні критерії оцінки:
Наявність живої матки;
Присутні всі стадії розвитку джмелів: яйця, личинки, лялечки і дорослі особини;
Кількість джмелів не менше 60 штук;
Відсутність трутнів і молодих маток – ознака початку роспаду.
Другий важливий момент – установка вуликів в теплиці. Після транспортування потрібно дати джмелям заспокоїтися і адаптуватися на новому місці. Не відкривайте вулик протягом 1-3 годин і до заходу сонця.
Рекомендації по використанню джмелів
При установці вуликів в теплиці важливо дотримуватися наступних рекомендацій:
Перший вулик повинен розташовуватися не ближче 7 метрів від входу.
Оптимальна висота для установки вулика – 1 метр над рівнем підлоги.
Безперешкодний доступ до льотку важливий для джмелів, тому не варто ставити вулик в гущу рослин.
Забезпечте вулики захистом від перегріву і утворення конденсату. Оптимальна температура для джмелів – 22-25 °С, а вологість – 40-60 %.
У багатьох теплицях є контроль витрати CO2, що важливо для більш ефективного фотосинтезу, але його надлишок шкідливий для джмелів, тому розміщуйте вулики подалі від місць виходу газу.
Захистіть вулик від мурах, яких може привабити солодкий сироп.
Будьте вкрай обережні з будь-якими хімічними обробками в теплиці. Не варто забувати і про їх сумісності з джмелями!
Після установки вуликів переміщати їх не бажано, так як багато комах втратять дорогу додому і можуть загинути.
Джмелі є найбільш підходящими запилювачами для томату. Але важливо враховувати, що надмірне відвідування квітів комахами може викликати деформацію плода. Тому важливо розрахувати оптимальну кількість джмелиних вуликів на одну теплицю.
Розрахунок кількості вуликів джмелів
Відомо, що в середньому на одному гектарі теплиці висаджують близько 25 тисяч кущів томатів, на яких з інтенсивним цвітінням розпускається близько 55 тисяч квіток. Одна джмелина сім’я розрахована на запилення 7 тисяч квіток, тому в період максимального цвітіння на гектар в місяць потрібно в середньому 7-8 вуликів. Така норма джмелів оптимальна для томатів середнього розміру.
Для томатів черрі, у яких плоди дрібні і являють собою грона, необхідно більше запилювачів. З таким обсягом робіт краще впорається 10-12 одночасно встановлених вуликів (в місяць, в період активного цвітіння). Томат «Біф» великоплідний, у нього менше квіток на одній рослині, для його запилення доцільно використовувати менше вуликів (4-6).
Загальна кількість джмелиних сімей, розташованих на площі в 1 га/місяць
Середньоплодний томат
Томат черрі
Томат Біф
Природне освітлення
8–9 сімей (2-4-2*)
10-12 сімей (3-4-3)
4-6 сімей (2-3-2)
Теплиця з додатковим освітленням
13-15 сімей (4-5-4)
19-21 сімей (6-8-7)
9-11 сімей (3-4-3)
* – ПРИКЛАД. У момент активного цвітіння среднеплодного томату при природному освітленні нам потрібно створити загальну кількість вуликів в теплиці 7-8 штук. Рекомендуємо на початку цвітіння поставити 2 джмелині сім’ї, а так як кількість квіток збільшиться, через два тижні потрібно додати ще чотири, а ще через два тижні – додати ще дві.
Використання системи B-Control
У теплицях, обладнаних системами штучного освітлення, джмелів потрібно більше. Це пов’язано з тим, що комахи часто горять на розпечених лампах і гинуть, сім’я працює продовж меншого періоду. Щоб цього уникнути, радимо використовувати систему контролю відкривання і закривання лотків Agrolabs B-Control. Також цей виріб оснащений датчиком руху, який дозволяє підраховувати кількість вильотів і вльотів джмелів і правильно оцінювати запилюючу активність робочих особин. Стежити за якістю запилення віддалено, економлячи на трудовитратах, дозволяє програмне забезпечення БіоКонтролер, до якого підключено B-Control.
Найпростішими способами контролю якості запилення джмелями є:
підрахунок кількості джмелів, які вилетіли і залетіли (з пилком і без) за одиницю часу. Хороший показник вранці за 20 хвилин – 7 і більше польотів;
спостереження слідів активності джмелів на квітках. Під час відвідування квітки томату комаха залишає характерні темні сліди, які легко розпізнати.
Бажано підрахувати частку відвіданих квітів від загальної кількості квітів, що розпустились – це дозволить прийняти рішення про збільшення кількості сімей.
В середньому джмелина сім’я працює від 7 до 9 тижнів (в теплиці без додаткового освітлення), в залежності від мікроклімату і дотримуваних умов. Дотримуючись наших рекомендацій, ви зможете самостійно контролювати діяльність джмелиної сім’ї, але наші фахівці завжди готові відповісти на ваші запитання, відвідати ваше підприємство і розібратися в ситуації на місці.
Ми часто задаємо питання, який джміль, дрібний або великий, буде краще запилювати рослини в теплиці?
Вчені з Нової Зеландії з’ясували, що великі комахи витрачають більше часу, пролітають довшу відстань для пошуку та запам’ятовування квітки, що містить найбільшу кількість сахарози, ніж джмелі дрібнішого розміру. Вся справа в тому, що для джмелів дрібного розміру немає можливості віднести на собі велику кількість пилку і нектару, тому вони навіть не намагаються відлетіти далеко від свого гнізда в пошуках квітки багатої «їжею».
Як відрізняється поведінка дрібних і великих джмелів
Великі джмелі, виявивши багату на нектар квітку, можуть по кілька разів здійснювати обліточні польоти, запам’ятовуючи її розташування. Вчені провели низку експериментів, у яких брало участь понад 100 робочих особин джмелів. Їх поміщали в кімнату, де на штучно створених спорудах, що нагадують квіти, знаходилася різна кількість сахарози. В експерименті використовували джмелів різних розмірів. Великі особини витрачали довше часу і відлітали досить далеко від гнізда, щоб знайти і запам’ятати споруду з великим вмістом сахарози, зависали над нею, ніби вивчаючи її з усіх боків та запам’ятовуючи розташування. Дрібні комахи навпаки ніякого інтересу до «квіток» з великим вмістом вуглеводів не виказували. Вся причина в тому, що робочі особини невеликого розміру, незалежно від вмісту сахарози в годівниці, принесуть на собі однакову кількість пилку, на відміну від їх більших побратимів. Але, чим ближче квітка до їхньої оселі, тим менше сил і енергії маленький джміль витратить для польоту. Саме тому особини невеликого розміру займаються роботами всередині гнізда, а великі фуражири шукають рослини багаті на кормові ресурси.
Привабливість теплового візерунка квітки для джмелів
Як же джмелі запам’ятовують різні види квіток, які однаково багаті на вміст сахарози? Вчені з’ясували, що для кожної поверхні квітки характерні свої теплові малюнки, які залежать від того, як забарвлена рослина. Від пігментації залежить, як відбувається процес уловлювання сонячного світла та віддачі тепла. Використовуючи теплові рецептори на своїх лапках та антенах, джмелі розрізняють квіти за їх тепловими візерунками. Квітковий термогенез допомагає комахам-запилювачам підтримувати температуру тіла вище за мінімальний поріг польоту. Це дозволяє джмелям добувати корм і збирати нектар у холодніших умовах, уникаючи метаболічних витрат.
Вчені з Великобританії за допомогою тепловізора зробили термограми 118 видів рослин.
Фото. Квіткові термограми демонструють діапазон температур на різних ділянках рослини
Фотографії наочно демонструють, що теплові малюнки по квітці розподіляються нерівномірно. У більшості досліджуваних рослин видно, що в центрі квітки температура на кілька градусів вища, ніж на її периферії. Особливо чітко ця різниця помітна у видів, багатих на нектар. Саме цього теплового візерунка достатньо для джмелів, щоб зрозуміти, привабливою для нього є ця квітка чи ні.
Досліди реакції джмелів на цукровий сироп і тепло
Було проведено дослід, де створили два однакові штучні майданчики. До одного з них, для створення теплового малюнка, підключалися спеціальні нагрівачі. У такі місця встановлювалися годівниці з цукровим сиропом. Інший же майданчик залишався холодним, але на нього так само встановлювали контейнери з водою і розчином цукру. Ймовірність вибору для джмелів була очевидною. Вони відвідували той майданчик, де завдяки нагрівальним датчикам штучно було створено тепловий малюнок, що дозволяє комахам запам’ятати це місце.
Фото. Штучні майданчики, які використовувалися в експерименті
Але запилювачі можуть використовувати підказки теплового візерунка тільки в сонячну погоду і якщо квіти ростуть у незатінених місцях, інакше рослини не створюють теплові малюнки і запилювачі не можуть відреагувати на них.
Дивовижні здібності джмелів не перестають нас дивувати. Цікаво, чого ще ми не знаємо про ці разючі створіння природи?!
Зростаюча кількість досліджень показала, що комахи і членистоногі можуть діяти як агенти, що поширюють та пасивно передають патогени потенційним господарям, при цьому самі не схильні до зараження. Наприклад, у ґрунтовому середовищі колемболи можуть сприяти поширенню грибків Beauveria bassiana, несучи конідії, прикріплені до їхнього тіла або розташовані в кишківнику. У медоносних бджіл та джмелів форетні кліщі Варроа були ідентифіковані як поширені переносники вірусів та грибків, що викликають загибель та руйнування бджолиних та джмелиних сімей. Отже, членистоногі-переносники можуть формувати прямі та непрямі взаємодії між патогеном та його господарем і, отже, впливати на динаміку їхньої популяції. Хоча такі взаємодії мають бути звичними за своєю природою, роль членистоногих у процесі рознесення патогенів залишається мало вивченою.
У боротьбі зі шкідниками, як показує практика, використання якогось одного засобу контролю їхньої популяції часто має низьку ефективність. У пошуках нових засобів та методів боротьби з фітофагами постало питання визначення взаємодій між ентоматопатогенами та хижаками, здатність хижаків транспортувати патогени в колонії шкідників, у спробі використовувати комбінації цих двох засобів біологічного контролю шкідників.
Комахи можуть збільшити швидкість, з якою хвороба горизонтально передається сприйнятливим господарям, або через прямий фізичний контакт (наприклад, під час хижацтва або спроби паразитизму), або опосередковано, вивільняючи інфекційні пропагули (спори грибів) у довкілля. У таких випадках, коли існує тісна асоціація між агентом поширення та господарем, чутливим до патогену, зустріч між видами, що взаємодіють, не є випадковою подією. Наприклад, здатність хижака поширювати грибкові конідії Beauveria bassiana на свою здобич буде в першу чергу залежати від того, як конідії видаляються з кутикули (або під час чищення, або при ходьбі) і від його поведінки при пошуку їжі (наприклад, місцезнаходження довкілля, пошукова поведінка з обмеженою областю пошуку), які сприяють збільшенню просторового збігу з жертвою.
Дослідження здатності фітосеїдних кліщів росносити спори ентомопатогенного гриба Beauveria bassiana у місця скупчення трипсів
Beauveria bassiana – ентомопатогенний гриб, який як господаря може використовувати більше 200 видів з більшості загонів комах, при цьому деякі ізоляти демонструють високий ступінь специфічності. Конідії можуть бути рознесені за допомогою руху повітря завдяки мікроскопічним розмірам (1-3 мкм), так і при контакті з інфікованими господарями або через агентів поширення. Конідії прикріплюються до кутикули господаря, проростають, проникають у господаря за допомогою ферментативних та механічних процесів, а потім відтворюються, використовуючи гемолімфу та різні тканини господаря. Як тільки поживні речовини господаря виснажуються, гриб пробиває кутикулу зсередини і утворює велику кількість спор. Комерційні штами B. bassiana використовуються для боротьби зі шкідниками у програмах біологічного захисту (IPM). Їх зазвичай розпорошують на посіви як пестициди. Можливість контакту з господарем залежить від просторового розподілу шкідників.
Західний квітковий трипс (Frankliniella occidentalis) – ціль експериментів
Багатоїдна комаха, яка харчується майже всіма частинами рослин, від листя до квітів і стручків, вона також може переносити ряд рослинних вірусів. Frankliniella occidentalis може ховатися у важкодосяжних частинах рослин, де пестициди не можуть дістатися до них.
Як хижі кліщі, що харчуються трипсами і здатні переносити спори Beauveria bassiana, були обрані Amblyseius cucumeris і Amblyseius swirskii.
Планування експерименту Beauveria bassiana
Матеріал A. cucumeris, що вирощувався на темноногому кліщі (Aleuroglyphus ovatus) як корм, у той час як A. swirskii, вирощувався на кормовій суміші, що містить винного кліща (Carpoglyphus lactis) і пилок вишні. Frankliniella occidentalis був отриманий з лабораторної колонії і вирощений на рослині червоної квасолі (Phaseolus vulgaris) з пилком вишні. Усі колонії витримували при 25 °C, відносній вологості 60-70 % і світловому циклі 14/10 (світло/темрява). Штам Beauveria bassiana ANT-03 був зареєстрований для боротьби з трипсами. Для всіх експериментів був використаний порошок B. bassiana технічної чистоти, що містить 5×1010 КУО/г.
Мал. 1 Схематичний малюнок структури квасолі після обрізки (ліворуч). Кожна частина рослини (листок та стебло) позначена номером (праворуч). Пробірка Епендорфа, що містить хижих кліщів і грибкові конідії, які потрібно вивільнити, була прикріплена в позиції 8. Приклад просторового розподілу личинкових трипсів проілюстрований з використанням жовтих овальних плям – у цьому випадку трипси в основному накопичуються на листку 5, там же відкладаються яйця
Щоб перевірити здатність хижих кліщів доставляти B. bassiana трипсам, вчені спочатку встановили роздільники рослини на частини, заражені та не заражені трипсами. Щоб стандартизувати структуру рослини, спочатку обрізали квасолю (приблизно 20 см заввишки) до двох трилистків (Мал. 1).
Щоб створити скупчення личинок трипсів на рослині, було вміщено 25 яйцекладних самок трипсів на 24 години в сітчасту затискну клітку на одному листі. Передбачалося, що в період відкладання яєць самки трипса харчувалися і залишали на листі ароматичні відбитки, які можуть використовуватися хижими кліщами для визначення місцезнаходження жертви.
Уникнення помилок в експерименті
Щоб уникнути потенційної експериментальної помилки, пов’язаної з віком або положенням листя, половина рослин мала трипсів на листку 2 (Мал. 1), середній лист більш старого трійчастого листа, в той час як другий набір рослин мав трипсів на листку 5, середній лист молодого трійчастого листа (Мал. 1). Після відкладання яєць з рослини видаляли клітку-затискач і самок трипсів. Через чотири дні, коли більшість яєць перетворилося на личинок першого віку, були випущені хижі кліщі, з нанесеною на них B. bassiana на рослину.
Дорослі самки хижих кліщів різного віку піддавались контакту з конідіями B. bassiana у комерційному субстраті протягом двох годин для отримання максимального навантаження конідій на їхнє тіло (Мал. 2). У модифіковану пробірку Еппендорфа було поміщено 25 хижих кліщів з 0,2 г субстрату, зараженого B. bassiana. Пробірка прикріплювалася до стебла на рівній відстані від основи черешка двох трійчастих листків (Мал. 1).
Мал 2. Конідії B. bassiana на кутикулі Amblyseius cucumeris
Деталі експерименту Beauveria bassiana
Щоб контролювати поширення конідій B. bassiana повітрям і можливе механічне порушення під час експериментальних маніпуляцій, до рослини прикріплювали пробірку, що містить 0,2 г субстрату, зараженого B. bassiana (контрольна обробка). Кожна рослина була ізольована у паперовому циліндрі, а внутрішні стінки та дно паперового циліндра були покриті кільцями клею для запобігання поширенню конідій та хижих кліщів між експериментальними одиницями. Для кожного набору рослин (лист 2 проти листа 5) було три обробки: контроль, A. cucumeris, оброблений B. bassiana, і A. swirskii, оброблений B. bassiana. Експеримент повторювали дев’ять разів із двома рослинами на обробку в кожному блоці при 25 °C, відносній вологості 60-70 % та світловому циклі 14/10 (день/ніч). Два блоки, в яких трипси не залишалися на рослинах, були виключені з аналізу частки трипсів, що несуть B. bassiana, оскільки цей параметр неможливо оцінити відсутність трипсів.
Дослідження рослин в ході експериментів
Через 48 годин після випуску кліщів-фітосеїд, рослини були ретельно досліджені, щоб встановити кількість і просторовий розподіл хижаків і жертв, що вижили. Кожну з дев’яти частин рослини (Мал. 1) збирали та поміщали в одну чашу об’ємом 60 мл з кришкою. Чаша була наповнена вуглекислим газом, щоб зупинити рух трипсів та хижих кліщів, полегшити обіг і уникнути перехресного зараження грибками між особинами. Реєстрували кількість живих кліщів та трипсів на кожній частині рослини. Передбачалося, що загибель трипсів є результатом присутності хижаків, оскільки конідії B. bassiana не можуть прорости і проникнути в тканини трипсів протягом 48 годин.
Мал. 3 Кількість колонієутворюючих одиниць (КУО) B. bassiana, виділених на рослині через 48 годин після початку експерименту на рослинах без (контроль) та з хижими кліщами, A. cucumeris або A. swirskii
Щоб виявити присутність або відсутність Beauveria bassiana на живих трипсах, які залишалися на рослинах до кінця експерименту, трипси були індивідуально зібрані за допомогою стерилізованої зубочистки або чистої тонкої щітки і поміщені в невелику чашку Петрі (Ø 35 мм), що містить 2,5 мл поживного середовища для B. Bassiana. Чашки Петрі досліджували через 10 днів, коли можна було візуалізувати кількість колонієутворюючих одиниць (КУО). Розраховували частку трипсів, які несли конідії.
Щоб оцінити кількість конідій на кожній частині рослини після видалення комах, листя та стебла розрізали на невеликі шматочки (<2 см завширшки та завдовжки) і поміщали назад у одиночну чашку. Конідії змивали в кожну чашку і чашки поміщали на роторний шейкер на 2 години при швидкості 125 об/хв. Потім одну пробу суспензії 0,5 мл переносили на поживне середовище для B. bassiana і через 9 днів підраховували кількість КУО. Для кожної рослини відзначали суму КУО, доставлених на всю рослину і, конкретніше, кількість і пропорцію КУО на листі, де самки трипсу відкладали яйця.
Мал. 4 Кількість колонієутворюючих одиниць (КУО) B. bassiana, виділених з яєць трипсу (молоді проти старих) через 48 годин після початку експерименту на рослинах без (контроль) та з хижими кліщами, N. cucumeris або А. swirskii
Дані експериментів
У ході проведених дослідів були отримані такі дані, наведені на малюнках 3-6. Кількість КУО, зібраних з усієї рослини, значно різниться між обробками. Як A. swirskii, так і A. cucumeris сприяли збільшенню загальної кількості КУО на рослинах порівняно з контролем (Мал. 3). Одна рослина з контрольної обробки була виключена з аналізу, оскільки на одному аркуші висадилася надзвичайно велика кількість конідій (19800).
Взаємодія хижих кліщів з конидіями Beauveria bassiana
Було виявлено взаємодію між листом, у якому були відкладені яйця трипсу, та обробкою. Для A. swirskii кількість спор була більшою, коли яйця трипса відкладалися на молодий лист, ніж на старий. Amblyseius swirskii збільшував кількість КУО, виділених з листа, в якому були відкладені яйця трипса, порівняно з контролем та рослинами, на які виселяли A. Cucumeris (Мал. 4).
В ході експерименту було неможливо завантажити два види хижих кліщів з однаковою кількістю конідій. Таким чином оцінювали частку B. bassiana, доставлену до листа, в якому були відкладені яйця трипсів, двома видами хижих кліщів. Частка КУО, витягнутих з листа, в якому були відкладені яйця трипсів, варіювалася між обробками, при цьому A. swirskii збільшував частку B. bassiana на листі для відкладення трипсу в порівнянні з контролем, але не з A. cucumeris. Amblyseius swirskii доставляв значно більшу частку B. bassiana на лист, у якому трипс відкладав яйця, ніж A. cucumeris.
Мал. 5 Кількість трипсів, виділених на рослині через 48 годин після початку експерименту на рослинах без (контроль) та з хижими кліщами A. cucumeris або A. swirskii
Через сорок вісім годин після випуску хижих кліщів із рослин було вилучено більшу кількість A. swirskii, ніж A. cucumeris. Кількість трипсів, що залишилися на рослинах наприкінці експерименту, також варіювало між обробками (Мал. 5). Amblyseius swirskii сильніше знижував кількість трипсів на рослинах.
Результати проведеного дослідження показують, що A. swirskii та A. cucumeris мають здатність поширювати конідії B. bassiana на рослинах під час харчування. Однак A. swirskii ефективніший, ніж A. cucumeris, оскільки вони доставляють більшу кількість конідій у колонії трипсів.
Способи доставки конідій Beauveria bassiana на рослину
Є два основних способи, якими конідії можуть бути відокремлені від тіла хижого кліща та розпорошені по рослині. Їх можуть або активно прибирати кліщі під час чищення, або стираючи о поверхню рослини, коли хижі кліщі пересуваються. Чищення, за допомогою ніг, спостерігається у фітосеїдних кліщів, коли вони стикаються з потенційно патогенними грибами. Однак чищення неефективне видалення всіх конідій з тіла кліщів, особливо тих, які розташовані на спинних ділянках їх тіла. Також виявлено, що A. swirskii та A. cucumeris в основному видаляли конідії зі свого тіла, ходячи по поверхні рослини. Справді, тривалість ходьби впливає видалення конідій в обох видів. Трихоми та інші структури, пов’язані з поверхнею листя бобів, сприяють видаленню конідій при ходьбі кліщів (мал. 6В). Таким чином, хижі кліщі у пошуках їжі активно поширюють конідії B. bassiana у навколишньому середовищі.
Мал. 6 (A) Amblyseius cucumeris з конідіями Beauveria bassiana. (B) Amblyseius swirskii з конідіями Beauveria bassiana, випущеними на бобовий лист. Волоскоподібні структури являють собою щільні бобові трихоми.
Як можуть передаватися конидії Beauveria bassiana трипсам
За посередництва хижих кліщів передача конідій трипсу може бути пасивним або активним процесом. Конідії вивантажуються на поверхню рослин і можуть згодом пасивно прикріплюватися до кутикули трипсів, коли вони годуються на забрудненому субстраті. В якості альтернативи конідії можуть безпосередньо передаватися від хижих кліщів трипсам під час невдалого випадку хижацтва, що включає фізичний контакт між хижаком і жертвою. Присутність хижих кліщів у безпосередній близькості від колоній трипсів може проводити їх поведінка. Після виявлення хижаків трипси можуть перемикатися з постійного харчування на втечу, тим самим збільшуючи ймовірність контакту зі спорами, розсіяними на рослинах.
Розбіжності, що спостерігаються між A. swirskii і A. cucumeris в їх здатності поширювати конідії B. bassiana в колонії трипсів можуть виникати через відмінності в способах харчування хижаків. Як з’ясовано A. swirskii, пригнічував трипсів сильніше, ніж A. cucumeris в експериментальній установці. Різниця в пропорціях конідій, що доставляють у місця зосередження трипсів двома видами хижих кліщів, свідчить про кращу здатність A. swirskii вражати трипсів на квасоляних рослинах.
Важливість роботи конидій гриба Beauveria bassiana для захисту рослин від трипсів
Швидкість, з якою B. bassiana контактує зі своїм господарем, має вирішальне значення в контексті біологічного контролю не тільки тому, що вона безпосередньо пов’язана зі швидкістю зараження, але й тому, що життєздатність конідій дуже чутлива до умов навколишнього середовища, таких як УФ та вологість . У деяких випадках застосування B. bassiana як самостійного засобу контролю шкідників неефективне для боротьби з цільовими шкідниками. Наприклад, західні квіткові трипси часто ховаються в ущелинах рослин та бутонах. В результаті розпилення патогенних грибків мало впливає рівень зараженості трипсами. У таких обставинах здатність хижих кліщів доставляти хвороботворні мікроорганізми та грибки у колонії трипсів може збільшити передачу хвороби. У проведеному експерименті смертність трипсів після контакту з патогенами не оцінювалася. Тим не менш, було показано, що ЛД50 є відносно низькою для порошку B. bassiana технічної чистоти: приблизно 50 конідій на личинку F. occidentalis 2-го віку і лише 5 на дорослу особину.
Висновки про відносний потенціал A. swirskii та A. cucumeris у поширенні конідій Beauveria bassiana до трипсів
Були зроблені висновки, що в даних експериментальних умовах A. swirskii є найкращим засобом біологічної боротьби, оскільки він сильніше скорочує кількість трипсів і передає конідії більшій кількості трипсів, що рятуються від хижаків. Однак A. cucumeris може продемонструвати добрий потенціал як хижака, так і агента поширення ентомопатогенів при використанні в іншій асоціації сільськогосподарських культур та шкідників. Наприклад, у теплицях з регіонів з помірним кліматом було показано, що A. cucumeris показав такі ж характеристики, як і A. swirskii, як агент біоконтролю трипсів у змодельованих зимових умовах.
Як можна застосувати таку систему у програмі біологічного контролю?
Виробники випускають хижих кліщів та періодично обробляють рослини B. bassiana для боротьби з трипсами. Запропонована вченими стратегія не потребує двох окремих обробок, а потребує лише внесення конідій Beauveria bassiana (технічний порошок) у комерційну упаковку з хижими кліщами. Хижі кліщі збільшать швидкість передачі хвороб скритноживучим шкідникам. Загальний потенціал хижих видів кліщів як агентів поширення патогенів залежатиме від їхньої здатності бути навантаженим конідіями, їхньої здатності протистояти патогенним інфекціям та його активності у пошуках їжі. Хижі кліщі повинні бути тісно пов’язані з цільовим шкідником і мати можливість шукати, виявляти та взаємодіяти зі шкідниками на рослині, щоб вони могли розсіювати спори на рослині та на шкідників.
Автор перекладу: технолог із захисту рослин Компанії «Біо Захист»
Біологічний метод захисту тепличних рослин дозволяє контролювати шкідників, і здатний запобігти спалахи їхнього розвитку. В якості профілактики розвитку шкідників найбільш підходящим видом упаковки вважаються пакетики з фольги – саше. Кожний пакетик (саше) – це міні-лабораторія з виробництва ентомофагів, який протягом певного періоду часу випускає біоагентів для боротьби зі шкідниками.
Види фольгованих пакетиків
На базі своєї лабораторії компанія «Біо Захист» розробила нові види саше з різними термінами дії і піками активності. «Fast» були розроблені для для використання в теплицях з досвічування, а «Long» – для перших подовжених оборотів.
Фактична кількість хижаків, що працюють на культурі, буде значно вище заявленої. Крім того, що використання пакетованого матеріалу робить внесення матеріалу в культуру контрольованим (125 або 250 заявлених активних особин в кожному пакетику), воно також дозволяє прогнозувати кількість хижаків, що виходять по тижнях.
Пакетики з фольги «Standart»
Саше «Standart» забезпечує безперервний вихід хижого кліща протягом 30-35 днів. За весь період дії з одного пакетика виходить до 900 особин (при початкових 250 особинах) ентомофага, найбільша активність на 2-3 тижні. Це найпопулярніший вид упаковки ентомофагів.
Пакетики з фольги «Fast»
Саше «Fast» працює протягом 2-3 тижнів і підходить для використання на культурах де використовується система досвічування для ранньої боротьби з шкідниками. За цей період з кожного пакетика виходить до 700 хижаків із заявленими 250 особинами. Найбільш активний вихід кліща спостерігається на 1-2 тижні з подальшим зниженням.
Пакетики з фольги «Long»
Склад саше «Long» підібраний таким чином, щоб ентомофаги розвивалися і виходили на рослини протягом 6-7 тижнів. Загальний вихід ентомофага на один пакетик досягає 1100 особин з піком в 2-4 тижні.
Для регулювання термінів роботи пакетики з фольги використовуються спеціальні харчові добавки для кормового виду, які використовуються для даного виду хижаків. Відповідно, ентомофаг забезпечений необхідним харчуванням для росту, розвитку і розмноження. Але, коли кількість кліщів в пакетику досягає максимальних меж, хижак проходить через спеціальний отвір на рослину і поселяється на ній, при цьому не завдаючи абсолютно ніякої шкоди рослині. Покинувши пакетик, кліщ не повертається назад і використовує різні стадії (в залежності від виду) шкідника, проти якого працює. Слід зазначити, що для більш ефективного і щільного розселення ентомофага на рослину пакетики потрібно вішати не на листя, а на стовбур рослини. Для швидкої фіксації на рослині кожен пакетик обладнаний спеціальним зручним гачком.
Крім того, що склад кожного виду саше розроблений з урахуванням необхідного часу роботи, самі пакетики виготовляються з фольгованого матеріалу, який є вологостійким і посухостійким. У комплексі такий вид упаковки забезпечує максимально ефективне використання ентомофагів і дозволяє тривалий час підтримувати їх популяцію на культурі, навіть коли проводиться часткове зрізання рослин або їх частин (листя).
Без сумнівів можна стверджувати, що пакетований матеріал найбільш ефективний в профілактичній боротьбі з шкідниками тепличних культур, крім того, його зручно і максимально безпечно використовувати (відсутність кормових кліщів, субстрату-носія на листках).
Види ентомофагів в нових типах саше
Наступні ентомофаги доступні в нових типах саше:
Amblyseius californicus (Амблісейус каліфорнікус) працює проти павутинного кліща на огірку, троянді, винограді та полуниці;
Amblyseius swirskii (Амблісейус свірськи) підходить для боротьби з білокрилкою і трипсами на огірку, перці, баклажанах, троянді, гербері;
Amblyseius montdorensis (Амблісейус монтдоренсіс) застосовується для боротьби з трипсами, білокрилками, еріофоїдними і тарсонемідними кліщами на огірку, перці, троянді, полуниці.
Заселення ентомофагів здійснюється в кілька етапів шляхом підвішування пакетиків з фольги з гарантованим вмістом 125 або 250 рухомих хижаків на кожну 5-у або 10-у рослину (овочеві культури) або 1 погонний метр (декоративні культури).
Завдяки цій мініатюрній лабораторії в пакетиках з фольги можна створити стабільну популяцію хижаків на рослинах навіть без присутності шкідників, це дуже важливо для організації системи захисту в зимово-весняному обороті, так як після відкриття кватирок відбувається масовий заліт шкідників з вулиці.
Для досягнення стійкого результату в боротьбі з білокрилкою і трипсами ми також рекомендуємо використовувати Transeius montdorensis в поєднанні з іншими видами біоагентів, такими як: Hypoaspis miles, Eretmocerus eremicus, Encarsia formosa, Macrolophus pygmaeus, Orius spp.
Успіх захисту рослин в умовах сучасних технологій став сильно залежати від швидкості реагування і якості засобів захисту! Наша компанія постійно розширює асортимент інструментів і гарантує стабільно високу якість ентомофагів.
Автор статті: експерт із захисту рослин компанії «БіоЗахист»
Пестицид – це будь-яка речовина або суміш речовин, що використовуються для боротьби зі шкідниками та хворобами рослин. Залежно від їхнього типу, дозування та стійкості у навколишньому середовищі, вони можуть по-різному впливати на корисних комах. У 2000-ні роки здавалося, що проблему отруєння запилювачів пестицидами практично вирішено. Кількість випадків зменшилося порівняно з 1970-ми роками. Однак проблема гострого отруєння медоносної бджоли не зникла, а перетворилася на проблему отруєння «традиційними» пестицидами, такими як фосфорорганічні пестициди або піретроїди, на отруєння додатковими джерелами «сучасних» системних неонікотиноїдів та фіпронілу. Крім прямого впливу, запилювачі піддаються впливу через пилок, нектар і воду, які часто містять залишки пестицидів та викликають нейротоксичність, імунотоксичність, зміни поведінки, стрес, часто відбувається порушення в ендокринній системі, яке негативно позначається на репродуктивних функціях маток та трутнів.
Явище CCD – синдром руйнування бджолиних сімей
Мал. 1 Загибель імаго джмелів внаслідок дії пестицидів
Через різке зниження чисельності комах запилювачів у 2006 році у США Всесвітнім фондом захисту бджіл було вперше описано та застосовано термін Синдром руйнування бджолиних сімей (Colony collapse disorder або CCD). Так як джмелі – це рід перетинчастокрилих комах з сімейства справжніх бджіл (Apidae), у багатьох відношеннях близький до медоносних бджіл, цей термін надалі був застосований і до джмелів, отруєних пестицидами. CCD – це явище, при якому робочі особини залишають свої вулики, залишаючи розплід і матку та гинуть за його межами. При масовому отруєнні пестицидами мертвих джмелів у великій кількості можна побачити у проходах теплиці (Мал. 1), під лотками на центральній доріжці.
Сім’ї швидко слабшають, гинуть імаго та личинки, які не отримали необхідної поживи. Через розкладання частини розплоду, які дорослі особини не встигли винести, від вулика може виходити гнильний запах. Хронічне вплив пестицидів у вуликах і сільськогосподарських полях може порушити передачу нейронних сигналів у комах, що, у свою чергу, погіршує нюхові відчуття та просторову пам’ять, впливаючи на орієнтацію та навігаційні здібності. Саме тому джмелі не повертаються у свій вулик і гинуть за його межами (Мал. 2).
Досліди
Мал. 2 Отруєні джмелі, що загинули біля свого вулика
Джмелі мають зорову пам”ять
Перші досліди були проведені британськими вченими, вони доводять, що при дії пестицидів у джмелів порушується зорове сприйняття навколишнього світу. Пам’ять необхідна джмелям для того, щоб знаходити дорогу у свій вулик і для того, щоб запам’ятовувати рослини, які вони вже відвідували. Експериментатори досліджували вплив неонікотиноїдів на Bombus terrestris. Спочатку випробуванням підлягали джмелі, які перебували під впливом пестицидів. Їх розміщували у випробувальний бокс, у центрі якого розташовувався їхній «міні вулик», від якого в різні боки відходили коридори з нектарною годівницею. (Мал. 3).
Вдалим виконанням експерименту вважалося, якщо джміль без повторення відвідає всі годівниці з нектаром наприкінці кожного коридору і повернеться назад у свій будинок. Джмелі відвідували коридори не поспіль, але двічі в одне місце комаха не поверталася, що вказує на їхню зорову пам’ять.
Вплив тіаметоксану на джмелів
На другому етапі досліду на комах впливали тіаметоксамом і лише через півгодини приступали до експерименту. В результаті джмелі два або три рази відвідували одну й ту ж квітку, втрачаючи просторову орієнтацію. Причому великі особини здійснювали набагато більше подвійних чи навіть потрійних відвідувань, ніж їхні дрібні родичі. Дослідники висловили припущення, що чим більше за розмірами комаха, тим більше отрути вона ввібрала. Такі результати були отримані лише після одноразового впливу пестициду на джмеля.
Вплив імідаклоприду на джмелів
Швейцарськими вченими було вивчено вплив імідаклоприду на джмелині сім’ї. Імідаклоприд – один із класу неонікотиноїдних нейротоксичних інсектицидів, які викликають загибель комахи внаслідок гіперзбудження нейронів. Дослідження проводилося всередині самого вулика за допомогою камер, які протягом майже двох тижнів знаходилися над 12 гніздами, розміщеними в лабораторіях – 6 були зі звичайним нектаром та 6 з нектаром, до якого додали пестицид.
Мал. 3 Лабіринт, який застосовувався в експерименті
До спини кожної бджоли у 12 сім’ях був прикріплений крихітний датчик з візуальним кодом, що дозволяє здійснювати безперервний комп’ютеризований моніторинг їхнього розташування та діяльності. Ця технологія дозволила відстежити, що роблять неонікотиноїди з джмелями. Джмелі під впливом імідаклоприду були менш активними в гнізді, витрачали менше часу на годування личинок і мали менше соціальних взаємодій, ніж контрольні комахи. Навіть низькі концентрації неонікотиноїдів порушили поведінкові процеси, що регулюються циркадним ритмом та сном. Комаха більшу частину дня спала і навпаки, була надто активно в нічний період. Це зменшило можливість отримувати живлення, необхідне зростання та відтворення колонії, що призводило до загибелі сім’ї (Мал. 4).
Мал. 4 А. Комаха у пошуках їжі активна вдень та не активна вночі В. Незначна активність комах у пошуках їжі в нічний та денний час
В інших експериментах команда вчених показала, що бджолині сім’ї, які зазнали впливу імідаклоприду, стали нездатними регулювати температуру гнізда. Джмелі дуже добре підтримують внутрішню температуру свого вулика. Робочі особини часто будують восковий бар’єр, щоб захистити від холоду личинок, що ростуть. Під час випробування 8 з 9 контрольних сімей збудували такі «куполи», а одна колонія, яка зазнала впливу пестицидів, цього не зробила. Це говорить про знижену активність джмелів, які зазнали впливу імідаклоприду, які спостерігалися у лабораторних умовах.
Ознаки отруєння джмелів пестицидами різних класів
Часто виділяють 4 класи небезпеки пестицидів для бджіл та джмелів, відповідно до їх екотоксикологічної оцінки:
1 клас небезпеки – високонебезпечні для бджіл пестициди. Обмеження льоту 96-120 годин;
2 клас небезпеки – середньонебезпечні для бджіл пестициди. Обмеження льоту 48-72 години;
3 клас небезпеки – малонебезпечні бджіл пестициди. Обмеження льоту 24-48 годин;
4 клас небезпеки – практично безпечні для бджіл пестициди. Обмеження льоту 6-12 годин.
При загибелі джмелів загальними ознаками отруєння пестицидами є такі:
– зменшується активність фуражування, що відповідно знижує відсоток запилення у ентомофільних рослин;
– спостерігається велика кількість мертвих дорослих особин за межами вулика, у проходах теплиці, на центральних доріжках;
– кишківник у комахи стає темно-коричневого, темно-синього або чорного кольору і відрізняється пухкою структурою;
– у мертвих джмелів добре видно сильно висунутий язичок. (Мал. 5)
Мал. 5 Витягнута губа з язичком при отруєнні у Bombus terrestris
Вплив різних діючих речовин на джмелів
Разом із загальними клінічними проявами при отруєннях існують відмінності у діях різних класів пестицидів.
Фосфорорганічні інсектициди (актелік, фуфанон) пригнічують ацетилхолінестеразу, фермент нервової системи, що призводить до порушень у її роботі. У джмелів спостерігається перезбудження, судоми, розкоординація руху, параліч та загибель імаго.
Піретроїди та карбамати мають контактно-кишкову дію на комах. Вони здатні порушувати передачу електричних сигналів у нервовій системі. Це спричиняє феномен нокдауну у комах, порушуючи важливі процеси метаболізму. У джмеля спостерігаються уповільнені рухи, судоми, порушення координації руху, хоботок висунуто, тремтіння в кінцівках.
Похідні піридину викликають порушення в інгібіторах синтезу хітину. Оскільки дорослі комахи не линяють, порушення відбуваються у розвитку личинкової стадії. Недорозвинені лялечки та кокони спричиняють утворення недорозвинених крил і кінцівок у імаго. Регулятори синтезу хітину при дії на яйце, порушуючи його розвиток.
Висновок
Важливо пам’ятати, що всі засоби захисту рослин більшою чи меншою мірою небезпечні для джмелів. Отруєння комах-запилювачів пестицидами призводить до суттєвих витрат. Щоб уникнути цього, при виникненні питань щодо сумісності хімічного препарату з джмелями, краще проконсультуватися з фахівцями нашої компанії.
Ознайомитися з нашою пропозицією по запиленню можна за цим посиланням.
Останнім часом для захисту томату в теплицях все частіше використовується хижий клоп Macrolophus pygmaeus. Цей клоп є поліфагом, який в першу чергу харчується білокрилкою, в якості альтернативного джерела їжі може використовувати пилок, павутинного кліща, тлю і трипсів. При харчуванні білокрилками його біологічна ефективність становить 80-90 %, попелицею – 40-50 %, павутинними кліщами – 20 %. Макролофус активно харчується як шкідниками, так і соком рослин. Помічено, що при переході на раціон з рослинної їжі кожна стадія клопа розвивається повільніше, а тривалість життя дорослих особин, що сформувалися з таких личинок, скорочується.
Macrolophus pygmaeus – фази розвитку
Личинки 4-5-го віку найбільш активні в харчуванні, дорослі особини менш ненажерливі. За добу одна особина знищує до 40 дорослих особин попелиці. Білокрилку макролофус знищує ще активніше. Одна особина клопа за життя здатна знищити 3200 яєць або 2500 личинок білокрилки. Личинки хижака починають розвиватися вже при +15 °С незалежно від вологості повітря. Період ембріонального розвитку становить 14-21 день. Тривалість личинкової стадії, в залежності від температури повітря, становить 18-25 днів (5 личинкових стадій). Максимальна тривалість життя самки – 54 дні (в середньому 30 днів). Тривалість життя самців в середньому становить 27 днів. Розвиток одного покоління хижака становить від 37 до 43 днів. Плодючість при цьому може варіюватися в різних межах від 24 до 117 яєць (в середньому 50-80 яєць). В одній кладці в середньому буває не більше 7-8 яєць. Відродження макролофуса з яєць становить в середньому 79 %, а виживання личинок – 85 %, за умови, що вони харчуються їжею, багатою амінокислотами (білокрилка, великі яйця ситотроги і ін.).
Macrolophus pygmaeus – годівля
Як вже говорилося вище, при відсутності шкідників або альтернативних кормів макролофус може перейти на харчування соком рослин, при цьому в 5 разів скорочується тривалість його життя, відповідно, і плодючості. Для забезпечення макролофусів кормом рекомендуємо використовувати поживну суміш «МакФуд» (MacFood). Для швидкого збільшення популяції макролофуса в теплиці при профілактичному виселенні такий раціон оптимальний. MacFood має збалансований склад поживних кормів, який складається з яєць ситотроги, артемії, вітамінів, амінокислот і біологічно активних речовин.
Макролофус, який розвивається на MacFood, має високу життєздатність. На розвиток клопа і тривалість окремих етапів істотно впливає якість харчування. В середньому відродження макролофуса з яєць становить 82 %, а виживання личинок – 89 %. Загальна життєздатність становить 73 %.
При використанні монокорму (яєць зернової молі), відродження макролофуса з яєць склало 65 %, виживання личинок – 71 %, а загальна життєздатність – 63 %. Плодючість самок макролофуса також відрізняється. При годуванні поживною сумішшю МакФуд плодючість самки маролофуса становить 59 яєць на одну самку, а при харчуванні ситорогою – 43 яйця.
Залежно від життєвої стадії макролофус має різний показник хижацтва. Аналіз був узятий з поїдання яєць ситотроги. Після відродження личинок клопа в день з’їдають по 10 яєць зернової молі на одну особину. Найбільш ненажерливі 4-5 німфальних стадій, в день з’їдається 81 яйце ситотроги. З чого можна розрахувати витрата ситотроги в таблиці нижче.
Таблиця для розрахунку споживання яєць ситотрогів макролофусом протягом життя
Тривалість життя
Скільки днів існує
Скільки яєць споживає за день
Всього за період з’їдає яйця
Яйце
8
—
—
1 стадія
3
10
30
2 стадія
4
20
80
3 стадія
4
40
160
4 стадія
7
81
567
5 стадія
2
81
162
Імаго
30
50
1500
На підставі даних цієї таблиці можна розрахувати норми використання корму для макролофуса в теплиці. Середнє споживання становить 47 яєць/день, а максимальне – 81 яйці ситороги в день. Приблизно 50 000 яєць міститься в одному грамі ситотроги. Для розрахунку візьмемо площу теплиці площею 1 га, культура – томат.
Норма заселення макролофуса особин/га
Середнє споживання яєць/день на 1 га
Споживання грам ситотроги
Максимальне споживання яєць/день на 1 га
Споживання грам ситотроги
день
тиждень
день
тиждень
10 000
470 000
9
66
810 000
16
113
15 000
705 000
14
99
1 215 000
24
170
20 000
940 000
19
132
1 620 000
32
227
Норми годівлі Macrolophus pygmaeus
Аналізуючи дані таблиці, можна зробити висновок, що в залежності від щільності первинного виселення макролофуса на 1 м2 змінюються норми використання кормів. При виселенні однієї особини хижого клопа на квадратний метр в тиждень потрібно вносити від 66 до 113 грам корму на гектар в тиждень. Тому потрібно планувати прийом від 282 до 484 грам ситотроги в місяць. Для зручності рахунку потрібно мінімум 250 грам, а максимум 500 грам МакФуду в морозилці на місяць на 1 га помідор повинні бути в розпорядженні агронома.
При щільності заселення макролофуса в 2 особини/м2 необхідно застосовувати корм в межах від 132 до 227 грам ситотроги/тиждень. Відповідно, запас корму на місяць на 1 гектар томату повинен становити від 565 до 972 грам. Для зручності підрахунку необхідно в середньому 0,5-1 кг/місяць МакФуду.
З огляду на особливість макролофуса при високій щільності пошкоджувати томат і період росту культури, необхідно обмежити тривалість підгодівлі. Тому підгодівлі досить протягом 10-12 тижнів. Щоб вирішити, чи потрібно продовжувати підгодовувати макролофуса, потрібно звернути увагу на наявність пошкоджень рослин і наявність шкідника. Припиняти годування раніше не рекомендується, так як поголів’я недостатньо збільшилося. Така стратегія внесення і підгодівлі макролофуса потребує корегування при вирощуванні томатів черрі, перцю і баклажанів. На таких культурах стратегія інша.
Графік залежності швидкості розвитку макролофуса від типу раціону
Припинення внесення їжі зрівняє популяцію макролофуса і попередить пошкодження ним рослин, а також забезпечить достатню концентрацію хижака для запобігання розвитку шкідників. При виявленні пошкодження томатів макролофусом зверніться до технолога для спільного затвердження плану часткової корекції популяції хижака.
Автор статті: Провідний спеціаліст компанії “Біо Захист”
Бджолозапильні гібриди огірків користуються підвищеним попитом. В основному для запилення такого огірка використовувалися бджоли, але їх застосування має ряд недоліків:
високі витрати при цілорічному утриманні пасіки, витрати на придбання і годування бджіл;
медоносні бджоли більш примхливі до абіотичних факторів (температура, освітленість, вологість);
при масовому цвітінні полів, городів бджоли можуть вилітати з теплиці, від чого якість запилення огірків знижується.
Спосіб оцінки запилення огірка джмелями
Для визначення ефективності джмелів рекомендуємо щодня контролювати розпускання квіток у вечірній час (15:00-16:00). На огірку джмелі не залишають чітко видимих слідів відвідування. Для виявлення мікропошкоджень, залишених комахами-запилювачами, використовують спеціальну проявляючу рідину, що складається з етилового спирту, ацетону і гліцерину в пропорції 5:1:1,5. Склад наноситься на пелюстки квітів за допомогою ручного обприскувача. Через деякий час сліди проколів, залишені комахами, стають темними і добре помітними. Вони розташовуються від центру в радіусі 1 см. Цей прийом дозволить якісно оцінити відсоток запилення на огіркової культурі.
Рекомендована кількість джмелиних сімей на 1 га огірка
Огірок – рослина переважно однодомна, різностатева, тобто на одній рослині є чоловічі (тичинкові) і жіночі (пестикові) квітки. Тривалість цвітіння жіночих квіток становить 1-2 дня, для чоловічих доба, а запилення відбувається, якщо кожну квітку відвідують від 7 до 9 джмелів. У період активного цвітіння огірка в теплиці на 1 га одночасно розпускається до 80 тисяч квіток, тому, щоб забезпечити якісне запилення огірка на 1 гектар, необхідно розмістити близько 15 джмелиних сімей різного віку. На початку цвітіння огірка наша компанія радить розмістити 4 джмелиних сім’ї, а з другого тижня (через 10-14 днів) їх кількість збільшують до 9 джмелиних сімей, тобто додаємо ще 5 вуликів. Починаючи з другого місяця цвітіння рослин, в теплиці має бути 17-18 джмелиних сімей.
Рекомендації по розміщенню джмелів в теплиці для запилення огірків
джмелині сім’ї розміщують 1 вулик на підставках, забезпечених дахом, що захищає від води, подалі від труб опалення. У теплицях, де мешкають мурахи, необхідно встановлювати ловчі пояси зі спеціальним клеєм на опорах і підвісах, адже мурахи можуть значно послабити або знищити колонію джмелів;
сім’ї, в яких загинула велика частина джмелів, необхідно прибирати з теплиці, щоб запобігти поширенню інфекцій і хвороб;
принесені в теплицю вулики в різний час небажано розміщувати в безпосередній близькості один від одного. Це допоможе уникнути заселення нових вуликів шкідливими організмами, які активно розвиваються в відмираючих колоніях.
Важливі особливості використання джмелиної сім’ї на культурі огірок
Якісне запилення безпосередньо залежить від великої кількості джмелиних сімей, і збережеться воно тільки тоді, коли личинки і дорослі особини отримають повноцінне харчування. Важливо пам’ятати, що пилку і нектару на квітучих огіркових рослинах набагато менше, ніж на квітці томату, якого недостатньо для харчування дорослих комах. Дефіцит пилку викликає швидке скорочення чисельності колоній, тому джмелі, що використовуються для запилення огірків, потребують білкових і вуглеводних добавках. Наша компанія пропонує вам спеціальні посилені джмелева сім’ї, з великою кількістю робочих особин, які здатні активно працювати над огіркової культурою весь належний час.
Трансейюс (амблісейюс) монтдоренсіс – це універсальний хижий кліщ, який харчується трипсами, білокрилками, кліщами і дрібними комахами. Як і інші широко поширені хижі кліщі, він також може харчуватися пилком.
Розвиток популяції Amblyseius montdorensis
Зростання популяції монтдоренсіса залежить від температури, відносної вологості, характеру і наявності здобичі, а також інших джерел їжі. Низька вологість негативно позначається на кладці і вилуплення яєць, виживанні личинок, тривалості життя дорослих особин і часу розвитку популяції.
Розвиток від стадії яйця до дорослої особини займає 22 дні при 15 °С і близько 6 днів при 27 °С. При 30 °С розвиток займає 8 днів, а при 35 °С кліщі не розвиваються зовсім. При температурі 10 °С перетворення у дорослу особину також не відбувається.
Парування необхідно для розмноження у хижих кліщів. 60-70 % популяції представлено самками. Яйця монтдоренсіса чутливі до низької вологості. При 25 °C вилуплюється лише 50 % яєць. Однак низька відносна вологість повітря в теплиці не обов’язково негативно позначається на популяції хижих кліщів. У здорових і добре зрошуваних рослин мікроклімат, близький до листової поверхні (в так званому прикордонному шарі, де живуть кліщі), зазвичай більш вологий, ніж вологість навколишнього повітря, завдяки транспірації. Як і інші хижі кліщі, що харчуються білокрилками, монтдоренсіс універсальний, також він може харчуватися трипсами, кліщами, іншими дрібними комахами і пилком. Кліщі виживають на цих джерелах їжі при відсутності білокрилок. Крім того, популяція краще розвивається при змішаному харчуванні, ніж на одному джерелі.
Зимівля Amblyseius montdorensis
Montdorensis не входить в діапаузу. Так, кліщі погано переносять суворі зими за межами теплиць в районах помірного клімату. Ця особливість також дає можливість ефективно використовувати монтдоренсіс профілактично на початку зимово-весняного обороту.
Харчова поведінка Amblyseius montdorensis
Хижі кліщі проколюють свою здобич і висмоктують вміст. Крім білокрилок, монтдоренсіс полює на інші дрібні організми, такі як трипси, павутинний кліщ і тарсонеміди (суничні прозорі кліщі). Також монтдоренсіс харчується пилком, наприклад, на солодкому перці, де хижак може оселитися на культурі ще до появи шкідника.
Монтдоренсіс в основному полює на молоді (білі) яйця, гусениць і другу личинкову стадію білокрилок. При 25 °С за оптимальних умов доросла самка відкладає приблизно 2 яйця, якщо в якості здобичі виступає теплична білокрилка.
Життєвий цикл і зовнішній вигляд Amblyseius montdorensis
Життєвий цикл монтдоренсіса складається з наступних стадій: яйце, личинка, протонімфа, дейтонімфа і доросла особина. Яйця відкладаються на нижньому боці листків, часто в пазусі біля жилок. Вони овальні, білі, діаметром близько 0,14 мм. У личинок шість ніжок, вони того ж кольору, що і яйця, тільки трохи більше за розміром.
Личинки мондоренсіса потребують їжі, в разі її відсутності розвиток відбувається повільно і смертність серед них висока. Німфи крупніше личинок за розміром, у них 8 ніг. Колір білувато-жовтий. Дорослі особини мають 8 ніг, напівпрозоре плоске витягнуте тіло білого кольору, довжиною приблизно 0,4 мм. Кліщі дуже рухливі і активно шукають їжу на нижньому боці листків. Їх забарвлення може варіюватися в залежності від жертви, від майже прозорого білуватого до непрозорого білого або жовтого. Через їхні розміри і забарвлення їх складно знайти на культурі.
Кожна культура завжди буде здоровою, якщо отримає все необхідне для свого росту. Одним з важливих обмежуючих факторів для отримання чудового врожаю є погода. Перед обличчям різких кліматичних змін всі рослини отримують стрес, падають захисні властивості культур і починають з’являтися різні захворювання. В арсеналі всіх власників в наявності завжди є фунгіциди для боротьби. Однак кожне застосування пестицидів накопичує їхні залищки в плодах, а потім ці мікродози залишаються в організмі людини. Тоді виникає ризик виникнення різних захворювань: генетичних порушень у нащадків або канцерогенних захворювань у здорової популяції. Зокрема, кожне застосування синтетичних пестицидів також викликає стрес у рослин, внаслідок чого культура не забезпечує потенціал врожайності, який закладений в природі.
PlantoSys – добрива та стимулятори
Ягоди – особливі культури, які повинні бути максимально корисними і безпечними для здоров’я. І тут виникає питання щодо пошуку безпечних, ефективних стратегій вирощування. Допоможе в цьому питанні нідерландська компанія PlantoSys, яка розробила ряд природних біостимуляторів для усунення наслідків абіотичних (стресових) впливів, таких як погодні умови (пошкодження градом, надмірне сонце, перепади температури), недостатня освітленість, склад ґрунту (виснаження) і т.д. Сама компанія була заснована в 2008 році, з 2009 по 2010 рік проводилися наукові випробування препаратів і перевірка їх ефективності. Це дуже важливий фактор, Оскільки європейські стандарти вимагають ретельного тестування новинок, сертифікації і тільки потім дозволу на вільне поширення. Перші продукти вийшли на ринок в 2011 році. У 2016 році було відкрито філію в Швейцарії, а в 2018 році в Німеччині. Вся продукція зареєстрована в Нідерландах для використання в органічному землеробстві.
Добрива PlantoSys відповідають вимогам ЄС і можуть бути використані в разі дефіциту мінеральних речовин, а ще краще, для запобігання такого дефіциту. PlantoSys має спеціальні добрива з міддю (Cu), марганцем (Mn), цинком (Zn) і кальцієм (Ca).
Вся продукція розроблялася з урахуванням трьох основних принципів: системної дії, зміцнення і стійкості до самої природи. Це досягається за рахунок використання ефективних комбінацій наступних інгредієнтів: екстракту кори верби, кремнію, амінокислот, колоїдного срібла, мікрочастинок міді, мікрочастинок марганцю і цинку.
Як працює PlantoSys на рослинах?
PlantoSys розшифровується як «системне» – системне зміцнення рослин зсередини і зовні.
Зміцнення рослини зсередини:
SalicylPure (саліцилова кислота = рослинний гормон = сильний імунітет).
SilicaPower (кремнієве добриво).
Захист рослини ззовні:
Argentum (нано срібло = бактерицидна і противірусна дія).
Cuprum (мікромідь = фунгіцидну дію).
SalicylPure від PlantoSys
Щоб природним шляхом підняти імунітет рослин, використовують SalicylPure – препарат на основі екстракту кори верби, в якому міститься велика кількість саліцилової кислоти.
SalicylPure безпечний для бджіл, джмелів, ентомофагів і людини, схвалений в органічному сільському господарстві Нідерландів (входить в список препаратів для органічного сільського господарства Skal).
Саліцилова кислота (СК) – це рослинний гормон, який рослина починає виробляти для самозахисту кожен раз, коли вона заражається вірусами, бактеріями або грибками.
Переваги SalicylPure:
стимулює вироблення рослиною імунних білків;
підвищує стійкість до грибкових, бактеріальних і вірусних захворювань;
повністю розкладається в рослині,;
внесення 1-1,5 л на гектар/тиждень;
безпечний для джмелів, бджіл і людини.
Систематичне застосування SalicylPure стимулює імунітет проти певних шкідників, таких як павутинний кліщ, іржавий кліщ і тля. Відновлення після стресу забезпечується швидше, покращує розвиток кореневої системи, що забезпечує збільшення врожаю в майбутньому.
SilicaPower для зміцнення рослин
Кремній (Si) в цьому біостимуляторі зміцнює клітинні стінки і епідерміс листа. Особлива форма кремнію (ортокремнієва кислота) в препараті полегшує його засвоєння рослиною. SilicaPower схвалена для використання в органічному землеробстві в Нідерландах.
Чим саме корисний кремній для рослин і які його функції:
Фізичні (абіотичні стреси): кремній підвищує стійкість до погодних впливів, таких як вітер, посуха, ультрафіолетове випромінювання, перепади температур;
Хімічний (абіотичний стрес): кремній покращує захист рослин при підвищенні засоленості ґрунту, дисбалансі поживних речовин і важких металів;
Біохімічна функція: кремній збільшує вироблення фенолів, фітоалексинів, ферментів та інших хімічних сигнальних сполук, що активують захисну систему рослин;
Механічний: шар кремнію і більш міцна клітинна стінка робить рослину більш стійким до пошкоджень і проникнення патогенів через листову пластину або корінь.
Кремній забезпечує:
більш рівномірний розподіл Ca і Mn по всій рослині;
підсилює фотосинтез;
покращує забарвлення квіток і листя;
сприяє накопиченню більшої кількості сухої речовини в рослині;
збільшує вагу плодів за рахунок зміцнення клітинних стінок;
поліпшуються смакові властивості;
підвищує стійкість до грибкових захворювань, зокрема борошнистої роси;
стимулює розвиток і ріст кореневих волосків,.
Цей продукт простий у використанні і економічно вигідний.
Дозування для обприскування: 0,4-0,6 л/га в тиждень в залежності від обсягу врожаю.
Дозування для крапельного поливу: 350 мл/га в тиждень через дозатор добрив або окрему додаткову ємність. Інтервал між обприскуваннями: один раз в 7 днів.
Argentum для захисту від бактеріальних і вірусних захворювань
Колоїдне срібло в цьому біостимуляторі знижує стрес. Також він грає важливу роль в підтримці здатності засвоювати мікроелементи, покращує ріст рослин і врожайність.
Препарат Argentum виконує наступні функції:
в поєднанні з саліциловою кислотою Argentum застосовується як комплексне рішення проблем з бактеріями і вірусами;
покращує якість плодів;
збільшує термін зберігання плодів;
скорочує використання добрив;
підвищує врожайність;
покращує засвоєння мікроелементів (Mg, Fe);
підвищує рівень хлорофілу в рослинах, що підвищує інтенсивність фотосинтезу;
підвищує рівень синтезу цукру в рослині;
зменшує вплив стресу для рослин через абіотичні фактори (град, перепади температури тощо).
Дозування: 100-200 мл/га на тиждень, залежно від обсягу врожаю. Інтервал між обприскуваннями: один раз в 7 днів.
Cuprum для бортьби з грибковими захворюваннями
Мідне листове добриво з вираженою фунгіцидною дією проти широкого спектру грибкових захворювань. Мікрочастинки Cu зміцнюють рослини, виробляючи білки, необхідні для синтезу хлорофілу. Мідь також позитивно впливає на ферменти, які каталізують перетворення азоту.
За рахунок особливих мікророзмірів частинок міді забезпечується висока активність препарату і економічність застосування. Таким чином, міді потрібно менше в порівнянні з іншими мідьвмісними препаратами.
Особливості препарату Cuprum:
1 літр містить 14 грам колоїдної міді;
Дозування: 0,5 л/га = 7 г міді/га;
7 грам містить 1,5 мільярда частинок міді;
Видимих залишків немає;
Без залишку, який можна визначити: обприскування 2 рази безпосередньо на яблуні дає лише 11 % MRL;
Відсутнє гальмування росту культур;
Немає терміну очікування до збору врожаю.
Дія на рослину Cuprum настільки м’яка, що його можна використовувати навіть під час цвітіння. Особлива форма міді не впливає на тичинки, на відміну від інших солей міді.
Офіційний дистриб’ютор PlantoSys в Україні є компанія ТОВ «БіоЗахист».
Про IPM метод захисту рослин продукцією PlantoSys зв’язатися до автора статті.
Автор статті: Провідний спеціаліст компанії “Біо Захист”
Огляд наукової літератури про сліпняків трав’яних лігусів, що викликають гормональний дисбаланс та зміну вегетативного росту рослин: зниження росту стебел та збільшення росту бічних пагонів, а також деформацію плодів та насіння.
Таксономія сліпняків трав’яних лігусів Lygus
Клопи-сліпняки роду Lygus Hahn, 1833 відносяться до триби Трав’яних клопів Mirini Hahn, 1831; до підродини Mirinae Hahn, 1831 [1]; до сімейства Сліпняків Miridae Hahn, 1831.
Сімейство Сліпняки (Miridae) входить до складу надродини Мироподібні (Miroidea), інфразагону Цимікоморфні клопи (Cimicomorpha Leston, Pendergrast et Southwood, 1954), підряду Клопи (Heteroptera), загону Напівжорсткокрилі (HemipteraLatreille, 1810), підкласу Комахи (Insecta), класу Шестіногі (Hexapoda).
На Землі зареєстровано 164 номінальних видів роду Lygus, з них в Палеарктиці – 21 вид [2, 3], в Європі – 7 видів [3]:
Lygus rugulipennis Poppius, 1911 – клоп трав’яний;
Lygus pratensis (Linnaeus, 1758) – клоп польовий;
Lygus gemellatus (Herrich-Schaeffer, 1835) – лігус полинний;
Lygus wagneri (Poppius, 1911);
Lygus punctatus (Zetterstedt, 1838);
Lygus monticola (Aglyamzyanov, 2009);
Lygus orientis (Aglyamzyanov, 2009).
Тільки перші два види, будучи поліфагами, здатні проникати в тепличні споруди, де пошкоджують овочеві та квіткові культури. У цьому Lygus rugulipennis – як найпоширеніший, а й найбільш масовий і шкідливий вид [4].
Lygus rugulipennis Poppius, 1911 – трав’яний клоп
Базіонім (назва, дана виду при його первісному описі): Lygus rugulipennis Poppius, 1911 [5] (ruga=зморшка, penna=крило, тобто зморщенокрилий). Вперше вигляд описаний Поппіусом з Фінляндії.
Згідно до Code EPPO (European and Mediterranean Plant Protection Organization) клоп опушений Lygus rugulipennis кодується як LYGURU.
Поширення клопа-сліпняка Lygus Hahn
Lygus rugulipennis має Голарктичний ареал. У Неарктиці (Північна Америка) поширений від Аляски до півночі Каліфорнії та півдня Колорадо [6]. У Палеарктиці вид відзначений від Великобританії та Іспанії до Далекого Сходу росії та Японії [7, 8].
Морфологія клопа-сліпняка Lygus
Імаго клопа-сліпняка
Дорослі L. rugulipennis середніх розмірів зі сплощеним овальним тілом (мал. 1). Довжина тіла самок 5,7 мм, самців 4,7 мм. Тіло вкрите тонким пушком. Забарвлення тіла залежить від статі та пори року. Основними кольорами загального забарвлення є сіро-зелений, бурий або чорнуватий. Зазвичай самки забарвлені світліше за самців. Передньоспинка і надкрила більш менш виразно пунктировані.
Зовніншній вигляд імаго клопа-сліпняка
Голова майже вертикальна, спереду виглядає більш-менш трикутною; часто (особливо у самців) з темно-бурим, рудим або темно-червоним мінливим малюнком. Задній край тімені з виразним поперечним реберцем. Лоб гладкий, без борозенок, блискучий. Верхня половина лиштви не прикрита щоками, добре видна збоку. Очі крупні. Внутрішній край ока сильно увігнутий.
Вусики тонкі, довші за половину тіла, густо опушені короткими сріблястими волосками; прикріплені трохи вище від нижнього краю очей. 3-й членик вусиків коротший за 2-й. Довжина другого членика вусика більша за ширину голови.
Передньоспинка трапецієподібна, передній край її виразно відділений глибокою поперечною борозенкою у вигляді вузького опуклого шийного кільця. Передньоспинка в передній частині з двома невеликими слабо виступаючими роз’єднаними мозолистими підвищеннями. Задній край передньоспинки в 1,6-2,3 раза ширший за голову.
Щиток трикутний. Його основа цілком прикрита заднім краєм передньоспинки. Передньоспинка і щиток з темним малюнком. Малюнок передньоспинки часто дуже мінливий. На щитку він менш варіабельний, здебільшого у вигляді тупокутної плями, повної або неповної літери “W” або пари симетричних трикутних плям, розташованих уздовж середньої лінії.
Надкрила як визначник виду
Надкрила заходять за вершину черевця. Вони чітко розділені борозенками на ділянки – клавус, коріум, кунеус і перепоночку. Коріум із трьома жилками. Назовні від коріума розташовується емболіум. Кунеус по зовнішньому краю відмежований від коріума маленькою вирізкою. У Lygus rugulipennis надкрила густо опушені, окремі волоски частково перекривають один одного. Перетинка темно-сіра, з двома комірками: великою і малою.
Ноги досить довгі та стрункі, зі зближеними тазиками. Задні стегна трохи вужчі за тім’я. Вершини стегон з двома бурими кільцями, які можуть бути незамкненими. Зовнішній бік гомілок з бурою плямою на коліні та ще однією бурою плямою (інколи кільцем) дистальніше за першу. Щетинки на гомілках чорні. Вершини гомілок і лапки темно-бурі. Лапки тричленникові.
Мал. 1. Доросла особина клопика опушеного Lygus rugulipennis [ориг.]: А) на листі баклажана; Б) на пелюстці соняшника
Генітальний сегмент самця у формі округленого конуса, лежить на вершині черевця, не втягнутий у попередні сегменти. Генітальний отвір на спинному боці. Едеагус у спокої втягнутий усередину. З боків від нього розташовані парамери, які сильно відрізняються один від одного за формою. Лівий парамер більший за правий. Його гіпофіз сплющений у вершинній частині, чутливий горбок короткий, густо обсаджений зубчиками (мал. 2, А). Гіпофіз правого парамера вигнутий майже під прямим кутом, тіло парамера посередині довжини з неглибокою перетяжкою; в основі з горбком, що сильно стирчить (мал. 2, Б). Спікула едеагуса не потовщена до вершини (мал. 2, В).
Яйця лігуса білуваті, злегка вигнуті, близько 1,7 мм завдовжки і 0,5 мм завширшки. Самка за допомогою зазубреної яйцекладки вставляє кожне яйце в рослинну тканину, частіше при основі листових черешків. Верхня частина яйця сплющена у вигляді кришечки; через неї вилуплюється личинка. Ембріогенез триває протягом 6-14 днів залежно від температури.
Личинки та німфи клопа-сліпняка
Клопи проходять через п’ять вікових груп, перш ніж стати дорослими. У стадії личинки мають 3 віки; вони зеленуваті з червоними вусиками і можуть бути помилково ідентифіковані як попелиці. У міру дорослішання, у стадії німфи (IV і V вік) у них розвиваються чотири подушечки (зачатки) крил і п’ять чорних плям на грудях і черевці. Загальний час розвитку всіх п’яти вікових груп коливається від 15 до 30 днів.
Німфа IV віку зеленувата (мал. 3, А). Німфа V віку (мал. 3, Б) з валькуватим тілом: довжина 3,7-4,4 мм, ширина 1,9-2,2 мм [5]. Голова завширшки 1,0 мм, тім’я – 0,5 мм. Лоб посередині з бурою смужкою. Очі бурі, іноді з рудим відтінком. Вусики 4-х членикові; 1-й і 2-й членики вусиків світліші; 3-й і 4-й – темніші; довжина члеників вусиків (мм) 0,5, 1,3, 0,8, 0,7. Передньоспинка буро-зелена, з двома зближеними чорними крапками. Довжина передньоспинки 0,7 мм, ширина в основі – 1,4 мм. Щиток з бурим малюнком, з двома розставленими чорними крапками. Зачатки надкрил світло-бурі. Черевце блідо-зелене. 2-3-й черевні тергіти вздовж середньої лінії з округлою жовтою плямою перед перитремою пахучої залози. На 3-му тергіті розташована одна чорна пляма.
Мал. 3. Клопик опушений Lygusrugulipennis на листі баклажану: А) німфа IV віку; Б) німфа V віку (ориг.)
Життєвий цикл клопа-сліпняка
Зимує клопик опушений Lygus rugulipennis у дорослій стадії переважно в лісовій підстилці та в гілках хвойних дерев, розташованих близько до землі.
Вид унівольтинний у Фінляндії [9]: клоп мігрує на культивовані поля в середині або наприкінці травня, відкладання яєць починається наприкінці травня, дорослі особини з’являються наприкінці липня або серпні.
У Північній Європі та Північній Америці Lygus rugulipennis є бівольтинним.
У Південній Європі (Італія) клопик розвивається в 3-х поколіннях [10].
Особливості харчування клопа-сліпняка Lygus
Lygus Rugulipennis домінує на заболочених ділянках, на заплавних луках малих річок, зволожених ділянках, узліссях листяних і соснових насаджень; найчисельніший на перелогових ділянках та необроблюваних полях і ділянках з рудеральною рослинністю; доволі чисельний на посівах сільськогосподарських культур (люцерна, конюшина та ін.) [3].
Маючи голарктичне поширення, цей високополіфаговий вид широко поширений як на трав’янистих, так і на деревних дикорослих рослинах і культурах, і його було зареєстровано на понад 320 рослинах-господарях [11].
На східноєвропейській території польові клопи як кормові використовують 257 видів рослин, що належать до 44 родин.
В умовах середньоруського лісостепу L. rugulipennis віддає перевагу суріпиці звичайній Barharea vulgaris; меншою мірою до полину гіркого Artemisia absinthium і злаків [12].
У Швеції L. rugulipennis віддає перевагу Matricaria perforata, Trifolium medium (L.) і Urtica dioica. у Німеччині L. rugulipennis відзначається на Senecio vulgaris L., Capsella bursa-pastoris Med., Thlaspi arvense L., Atriplex patula L., Matricaria L. sp., Urtica dioica.
Підкреслюється важлива роль бур’янів для польових клопів, які слугують для відкладання яєць, а також кормовими рослинами для личинок. Перед зимівлею L. rugulipennis харчуються на хвойних або листяних деревах, особливо на Corylus avellana L. і Quercus L. sp., а також на Calluna vulgaris (L.) Hill. Після зимівлі головними кормовими рослинами стають Vaccinium myrtillus L., Padus avium Mill., Ribes alpinum, Quercus L. і Salix L.
Особливість розмальовки тіла клопа-сліпняка Lygus
Зміна забарвлення спостерігається протягом життєвого циклу і за сезонами року, спостерігаються також деякі відмінності в забарвленні самців і самок. Загальну закономірність у зміні забарвлення L. rugulipennis і L. pratensis зі Швеції виявив Б. Кленберг (Kllenberg, 1946). За його спостереженнями молоді імаго світлі, мають зелене або жовте забарвлення. Потім з’являється червонуватий або червонувато-бурий колір. Перед зимівлею комахи стають темними, а навесні зимові кольори бліднуть. Самці світлішають повільніше й іноді залишаються яскраво забарвленими до самої смерті.
Молоді імаго L. rugulipennis і L. pachycnemis сірувато-зеленого кольору. Потім з’являються темні та буруваті тони, виражені більшою мірою у самців. Крім того, у L. rugulipennis до загального колірного фону включається червонуватий колір (Аглямзянов, 1990). Причини мінливості чорного малюнка до кінця не з’ясовані. Досліджені Е. Вагнером (Wagner, 1949) темні екземпляри були особинами літнього покоління, які недавно линяли. Він виділяв їх як форми, наприклад L. rugulipennis f. obscura. Зібрані Р.С. Аглямзяновим (1990) особини L. rugulipennis з “аномально” розвиненим малюнком на передньоспинці також були літнього покоління.
У L. rugulipennis М. Бонесс (1963) відзначив зворотну залежність між площею чорного малюнка та температурою. У його дослідженнях темний пігмент з’являвся у комах, які розвивалися за порівняно низьких температур (+15 °С).
Біологічні особливості клопа Lygus
Таблиця. Біологічні особливості клопика трав’яного (Lygus rugulipennis) при харчуванні стручками зеленої квасолі (температура 25±1°C, відносна вологість повітря 50-60 %, фотоперіод 14L:10D) [13]
Стадія розвитку
Середній час розвитку, діб
Яйце
10,1
Личинка I
3,3
Личинка II
2,6
Німфа III
2,8
Німфа IV
2,9
Німфа V
4,1
Усього (постембріональні стадії)
15,7
Тривалість життя самки
52
Тривалість життя самця
38
Плодючість
140-190
Тривалість відкладання яєць
25-43
Шкодочинність клопа Lygus
Клопи Lygus використовують дію “рваної рани і 20 мацерацій”, щоб викликати травму: рослинні тканини свердлять або рвуть, а потім слину вводять у тканину з подальшою ферментативною дією (мацерацією) і подальшим висмоктуванням клітинного вмісту.
Найбільш важливими секретованими ферментами, виявленими в слинних залозах Lygus rugulipennis, були полігалактуроназа, α-амілаза і лужні протеїнази [14]. Полігалактуроназа є ферментом, насамперед відповідальним за травлення рослинних тканин.
Полігалактуроназа в слині Lygus являє собою пектиназу, яка ферментативно перетравлює клітинні стінки рослин шляхом солюбілізації (колоїдний процес проникнення) середньої ламелі клітинної стінки.
Як тільки клітинні стінки зруйновані, α-амілази та протеази допомагають в екстра-пероральному перетравленні клітинного вмісту.
Трегалази детоксифікують алелохімічні речовини рослин, пригнічуючи механізми захисту рослин.
Переважне харчування клопів Lygus на меристематичних тканинах може призвести до гормонального дисбалансу, що виникає в результаті локалізованої травми в місці харчування. Гормональний дисбаланс призводить до зміни вегетативного росту, такого як зниження росту стебел і збільшення росту бічних пагонів, а також морфологічна деформація плодів або насіння.
Через важливу роль, яку ауксини відіграють у регуляції абсцисії (скидання органів рослини) плодоносних структур, абсцисія цих структур може відбуватися внаслідок руйнування тканин, що продукують ауксин-22, у меристематичних тканинах під час харчування клопом Lygus.
Встановлено, що харчування Lygus продукувало менше абсцисії квіток, коли рослини обробляли позакореневим ауксином і нафталін оцтовою кислотою [15].
Коли лігусні клопи присутні у великій кількості, налив насіння та дозрівання можуть бути зменшені майже на 100 %. Німфи та дорослі особини атакують стебла та репродуктивні частини рослин (мал. 3). Під час харчування клопи-лігуси можуть вводити токсичну слину в рослину і спричиняти відмирання та опадання насіннєвих структур з рослини. Навіть помірне харчування може призвести до передчасного скидання бруньок, деформованого насіння та зниження життєздатності насіння.
Мал. 4 Пошкодження від клопа, баклажани осінні (другий оборот) Бйонсе.
Мал. 5 Зав’язь баклажана, готова відвалитися [ориг.] Пошкодження клопом завдано у стадії бутонізації.
Заходи боротьби з клопом Lygus
Пестицидні обробки мають бути відкладені доти, доки не буде завершено вилуплення з яєць, але до того, як німфи досягнуть IV-V віку.
В Аризоні було протестовано 11 пестицидів [16], але жоден із них не був ефективним проти дорослих Lygus, тоді як деякі хімічні речовини були дуже ефективні на всіх стадиях розвитку німф. Orthene® і Vydate® показали хороші результати проти Lygus, але були недостатньо ефективні.
Найефективнішим інсектицидом проти Lygus був флонікамід (Teppeki®), що розробляється FMC. Цей інсектицид мав найкращий контроль над німфами Lygus, був найвисокопродуктивнішим і потребував на одну обробку менше, ніж інші найефективніші сполуки. Серед нових хімічних речовин для контролю Lygus був фіпроніл (Regent®), який працював трохи краще, ніж Vydate®, але був не такий ефективний, як Orthene®. З неонікотиноїдів динотефуран (Valent®) показав хорошу активність. Продуктивність спіромезифіну (Оберон®) була схожа на динотефуран, але потребувала одного розпилення менше.
У польових дослідженнях на суниці проти місцевого виду Lygus hesperus (Каліфорнія) було показано вплив флонікаміду (Beleaf® 50 SG) за нормою 199,6 грам препарату/га. Встановлено, що препарат має помірне пригнічення чисельності як імаго, так і німф клопа при дворазовій обробці протягом 2-х тижнів [17]. У цих же дослідженнях препарати на основі тіаметоксаму та фенпропатрину виявили низьку ефективність.
Біологічний метод боротьби. Ентомофаги проти клопів Lygus
Відомо, що в Європі на Lygus rugulipennis паразитують три види Peristenus (Hymenoptera: Braconidae: Euphorinae) – Peristenus rubricollis (Thomson, 1891), Peristenus digoneutis Loan, 1973 і Peristenus stygicus Loan, 1973 [18].
Види Peristenus відкладають яйця в молодих личинок мірид. Дорослі личинки паразитоїда з’являються або в V стадії клопа, або в дорослих особинах, де й заляльковуються. Розвиток паразитоїдів досить тривалий. Наприклад, у P. rubricollis потрібно 47 днів від відкладання яйця до заляльковування. Найвищий рівень паразитування спостерігається в другій половині липня і першій половині серпня. Життєвий цикл паразитоїда, мабуть, синхронізований з розвитком Lygus.
У Канаді Lygus rugulipennis, має два покоління німф на рік, перше з яких зазвичай характеризується нижчим рівнем паразитації (4-27 %). У середньому рівень паразитизації у другого покоління німф вищий за 32 %, зрідка досягаючи понад 60 %. Peristenus digoneutis домінує в місцях зростання конюшини, тоді як на ромашкових насадженнях P. stygicus і P. digoneutis з’являються з однаковою частотою [19].
Також було зареєстровано, що на яйцях Lygus rugulipennis паразитують Anaphes fuscipennis Haliday, 1833 (Hymenoptera: Mymaridae) [20].
З питань біологічного захисту рослин у теплицях, розробки проєктів захисту, впровадження IPM методу звертайтеся до технологів компанії Біо Захист.
Список основних джерел
[1] Die Miridae Hahn, 1831, des Mittelmeerraumes und der Makaronesischen Inseln (Hemiptera, Heteroptera). E Wagner and HH Weber, 1970.
[3] Демченко Н. Ю. Фауна и экология полужесткокрылых насекомых рода Lygus Hahn (Heteroptera, Miridae) европейской части России / Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук. – Воронеж. – 2004. – 20 с.
[4] Пучков В. Г. Главнейшие клопы-слепняки – вредители сельскохозяйственных культур / Киев: Наукова думка. – 1966. – 172 с.
[5] Poppius B. Eine neue Lygus-Art aus Finland // Meddelanden af Societas pro Fauna et Flora Fennica. via Catalogue of Life. – 1911. – T. 37. – S. 96-98.
[6] Schwartz M. D., Foottit R. G. Revision of the Nearctic Species of the Genus Lygus Hahn, with a Review of the Palaearctic Species (Heteroptera: Miridae) // Memoirs on Entomology, International. Gainesville, Florida, U. S. A.: Associated Publishers. – 1998. – Vol. 10. – 428 p.
[7] Kerzhner I. M., Josifov M. Family Miridae Hahn, 1833. Cimicomorpha II. / In: B. Aukema, Ch. Rieger (eds.). Catalogue of the Heteroptera of the Palaearctic Region // Amsterdam, The Netherlands: The Netherlands Entomology Society/ – 1999. – Vol. 3. – 577 p.
[8] Винокуров Н. Н., Канюкова Е. В., Голуб В. Б. Каталог полужесткокрылых насекомых (Heteroptera) Азиатской части России / Новосибирск: Наука. – 2010. – 320 с.
[10] Pansa M.G., Guidone L., Tavella L. Distribution and abundance of nymphal parasitoids of Lygus rugulipennis and Adelphocoris lineolatus in northwestern Italy // Bulletin of Insectology 2012. – Vol. 65. – N. 1. – P. 81-87,
[11] Holopainen J.K. Host plant preference of the tarnished plant bug Lygus rugulipennis Popp. (Heteroptera, Miridae) // J. Appl. Entomol. – 1989. – Vol. 107. – P. 78-82.
[12] Демченко Н.Ю., Голуб В.Б. Экологические особенности Lygus pratensis L. и L. rugulipennis Popp. (Heteroptera, Miridae) в условиях лесостепи и севера степной зоны европейской части России // Состояние и проблемы экосистем среднерусской лесостепи. — Воронеж, 2003. (Тр. учеб.-науч. центра Воронеж, гос. ун-та «Веневитиново»; вып. 16). — С. 44-51.
[13] Salerno G., Frati F., Conti E., Bin F. Influence of different diets and oviposition substrates on Lygus rugulipennis biology (Heteroptera: Miridae) // Eur. J. Entomol. – 2007. – Vol. 104. – P. 417-423. – DOI: 10.14411/eje.2007.061
[15] Fisher E.H., Riker A.J., Allen T.C. Bud, blossom, and pod drop of canning string beans reduced by plant hormones // Phytopathology. – 1946. – Vol. 36. – P. 504-523.
[16] Barkley V., Ellsworth P.C. Search for Effective Chemical Controls for Lygus Bugs and Whiteflies in Arizona Cotton // Arizona Cotton Report (P-138). – 2004. – P. 186-205. – www.researchgate.net/publication/253652617
[18] Joseph S.V., Bolda M. Efficacy of insecticides against Lygus hesperus Knight (Hemiptera: Miridae) in the California’s Central Coast strawberry // International Journal of Fruit Science. – 2016. – Vol. 16. – Is. supl: Proceedings of the 2015 North American Strawberry Symposium Submit an article Journal homepage. – P. 178-187. – doi.org/10.1080/15538362.2016.1219293
[19] Haye T. Studies on the ecology of European Peristenus spp. (Hymenoptera: Braconidae) and their potential for the biological control of Lygus spp. (Hemiptera: Miridae) in Canada // Aus dem Zoologischen Institut –Zoophysiologie. – Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Mathematisch-Naturwissenschaftlichen Fakultät der Christian-Albrechts-Universität zu Kiel vorgelegt von. – Kiel, Mai 2004
[20] Bilewicz-Pawi´nska T. Plant bugs (Heteroptera, Miridae) and their parasitoids (Hymenoptera, Braconidae) on cereal crops // Polish Ecol. Studies. – 1982. – Vol. 8. – P. 113-191.
