burger-close
arrow-bottom

Позначка: Шкідники

Beauveria bassiana. Перенесення ентомопатогенних грибів фітосеїдними кліщами

Зростаюча кількість досліджень показала, що комахи і членистоногі можуть діяти як агенти, що поширюють та пасивно передають патогени потенційним господарям, при цьому самі не схильні до зараження. Наприклад, у ґрунтовому середовищі колемболи можуть сприяти поширенню грибків Beauveria bassiana, несучи конідії, прикріплені до їхнього тіла або розташовані в кишківнику. У медоносних бджіл та джмелів форетні кліщі Варроа були ідентифіковані як поширені переносники вірусів та грибків, що викликають загибель та руйнування бджолиних та джмелиних сімей. Отже, членистоногі-переносники можуть формувати прямі та непрямі взаємодії між патогеном та його господарем і, отже, впливати на динаміку їхньої популяції. Хоча такі взаємодії мають бути звичними за своєю природою, роль членистоногих у процесі рознесення патогенів залишається мало вивченою.

У боротьбі зі шкідниками, як показує практика, використання якогось одного засобу контролю їхньої популяції часто має низьку ефективність. У пошуках нових засобів та методів боротьби з фітофагами постало питання визначення взаємодій між ентоматопатогенами та хижаками, здатність хижаків транспортувати патогени в колонії шкідників, у спробі використовувати комбінації цих двох засобів біологічного контролю шкідників.

Комахи можуть збільшити швидкість, з якою хвороба горизонтально передається сприйнятливим господарям, або через прямий фізичний контакт (наприклад, під час хижацтва або спроби паразитизму), або опосередковано, вивільняючи інфекційні пропагули (спори грибів) у довкілля. У таких випадках, коли існує тісна асоціація між агентом поширення та господарем, чутливим до патогену, зустріч між видами, що взаємодіють, не є випадковою подією. Наприклад, здатність хижака поширювати грибкові конідії Beauveria bassiana на свою здобич буде в першу чергу залежати від того, як конідії видаляються з кутикули (або під час чищення, або при ходьбі) і від його поведінки при пошуку їжі (наприклад, місцезнаходження довкілля, пошукова поведінка з обмеженою областю пошуку), які сприяють збільшенню просторового збігу з жертвою.

Дослідження здатності фітосеїдних кліщів росносити спори ентомопатогенного гриба Beauveria bassiana у місця скупчення трипсів

Beauveria bassiana – ентомопатогенний гриб, який як господаря може використовувати більше 200 видів з більшості загонів комах, при цьому деякі ізоляти демонструють високий ступінь специфічності. Конідії можуть бути рознесені за допомогою руху повітря завдяки мікроскопічним розмірам (1-3 мкм), так і при контакті з інфікованими господарями або через агентів поширення. Конідії прикріплюються до кутикули господаря, проростають, проникають у господаря за допомогою ферментативних та механічних процесів, а потім відтворюються, використовуючи гемолімфу та різні тканини господаря. Як тільки поживні речовини господаря виснажуються, гриб пробиває кутикулу зсередини і утворює велику кількість спор. Комерційні штами B. bassiana використовуються для боротьби зі шкідниками у програмах біологічного захисту (IPM). Їх зазвичай розпорошують на посіви як пестициди. Можливість контакту з господарем залежить від просторового розподілу шкідників.

Західний квітковий трипс (Frankliniella occidentalis) – ціль експериментів

Багатоїдна комаха, яка харчується майже всіма частинами рослин, від листя до квітів і стручків, вона також може переносити ряд рослинних вірусів. Frankliniella occidentalis може ховатися у важкодосяжних частинах рослин, де пестициди не можуть дістатися до них.

Як хижі кліщі, що харчуються трипсами і здатні переносити спори Beauveria bassiana, були обрані Amblyseius cucumeris і Amblyseius swirskii.

Планування експерименту Beauveria bassiana

Матеріал A. cucumeris, що вирощувався на темноногому кліщі (Aleuroglyphus ovatus) як корм, у той час як A. swirskii, вирощувався на кормовій суміші, що містить винного кліща (Carpoglyphus lactis) і пилок вишні. Frankliniella occidentalis був отриманий з лабораторної колонії і вирощений на рослині червоної квасолі (Phaseolus vulgaris) з пилком вишні. Усі колонії витримували при 25 °C, відносній вологості 60-70 % і світловому циклі 14/10 (світло/темрява). Штам Beauveria bassiana ANT-03 був зареєстрований для боротьби з трипсами. Для всіх експериментів був використаний порошок B. bassiana технічної чистоти, що містить 5×1010 КУО/г.

Мал. 1 Схематичний малюнок структури квасолі після обрізки (ліворуч). Кожна частина рослини (листок та стебло) позначена номером (праворуч). Пробірка Епендорфа, що містить хижих кліщів і грибкові конідії, які потрібно вивільнити, була прикріплена в позиції 8. Приклад просторового розподілу личинкових трипсів проілюстрований з використанням жовтих овальних плям – у цьому випадку трипси в основному накопичуються на листку 5, там же відкладаються яйця

Щоб перевірити здатність хижих кліщів доставляти B. bassiana трипсам, вчені спочатку встановили роздільники рослини на частини, заражені та не заражені трипсами. Щоб стандартизувати структуру рослини, спочатку обрізали квасолю (приблизно 20 см заввишки) до двох трилистків (Мал. 1).

Щоб створити скупчення личинок трипсів на рослині, було вміщено 25 яйцекладних самок трипсів на 24 години в сітчасту затискну клітку на одному листі. Передбачалося, що в період відкладання яєць самки трипса харчувалися і залишали на листі ароматичні відбитки, які можуть використовуватися хижими кліщами для визначення місцезнаходження жертви.

Уникнення помилок в експерименті

Щоб уникнути потенційної експериментальної помилки, пов’язаної з віком або положенням листя, половина рослин мала трипсів на листку 2 (Мал. 1), середній лист більш старого трійчастого листа, в той час як другий набір рослин мав трипсів на листку 5, середній лист молодого трійчастого листа (Мал. 1). Після відкладання яєць з рослини видаляли клітку-затискач і самок трипсів. Через чотири дні, коли більшість яєць перетворилося на личинок першого віку, були випущені хижі кліщі, з нанесеною на них B. bassiana на рослину.

Дорослі самки хижих кліщів різного віку піддавались контакту з конідіями B. bassiana у комерційному субстраті протягом двох годин для отримання максимального навантаження конідій на їхнє тіло (Мал. 2). У модифіковану пробірку Еппендорфа було поміщено 25 хижих кліщів з 0,2 г субстрату, зараженого B. bassiana. Пробірка прикріплювалася до стебла на рівній відстані від основи черешка двох трійчастих листків (Мал. 1).

Мал 2. Конідії B. bassiana на кутикулі Amblyseius cucumeris

Деталі експерименту Beauveria bassiana

Щоб контролювати поширення конідій B. bassiana повітрям і можливе механічне порушення під час експериментальних маніпуляцій, до рослини прикріплювали пробірку, що містить 0,2 г субстрату, зараженого B. bassiana (контрольна обробка). Кожна рослина була ізольована у паперовому циліндрі, а внутрішні стінки та дно паперового циліндра були покриті кільцями клею для запобігання поширенню конідій та хижих кліщів між експериментальними одиницями. Для кожного набору рослин (лист 2 проти листа 5) було три обробки: контроль, A. cucumeris, оброблений B. bassiana, і A. swirskii, оброблений B. bassiana. Експеримент повторювали дев’ять разів із двома рослинами на обробку в кожному блоці при 25 °C, відносній вологості 60-70 % та світловому циклі 14/10 (день/ніч). Два блоки, в яких трипси не залишалися на рослинах, були виключені з аналізу частки трипсів, що несуть B. bassiana, оскільки цей параметр неможливо оцінити відсутність трипсів.

Дослідження рослин в ході експериментів

Через 48 годин після випуску кліщів-фітосеїд, рослини були ретельно досліджені, щоб встановити кількість і просторовий розподіл хижаків і жертв, що вижили. Кожну з дев’яти частин рослини (Мал. 1) збирали та поміщали в одну чашу об’ємом 60 мл з кришкою. Чаша була наповнена вуглекислим газом, щоб зупинити рух трипсів та хижих кліщів, полегшити обіг і уникнути перехресного зараження грибками між особинами. Реєстрували кількість живих кліщів та трипсів на кожній частині рослини. Передбачалося, що загибель трипсів є результатом присутності хижаків, оскільки конідії B. bassiana не можуть прорости і проникнути в тканини трипсів протягом 48 годин.

Мал. 3 Кількість колонієутворюючих одиниць (КУО) B. bassiana, виділених на рослині через 48 годин після початку експерименту на рослинах без (контроль) та з хижими кліщами, A. cucumeris або A. swirskii

Щоб виявити присутність або відсутність Beauveria bassiana на живих трипсах, які залишалися на рослинах до кінця експерименту, трипси були індивідуально зібрані за допомогою стерилізованої зубочистки або чистої тонкої щітки і поміщені в невелику чашку Петрі (Ø 35 мм), що містить 2,5 мл поживного середовища для B. Bassiana. Чашки Петрі досліджували через 10 днів, коли можна було візуалізувати кількість колонієутворюючих одиниць (КУО). Розраховували частку трипсів, які несли конідії.

Щоб оцінити кількість конідій на кожній частині рослини після видалення комах, листя та стебла розрізали на невеликі шматочки (<2 см завширшки та завдовжки) і поміщали назад у одиночну чашку. Конідії змивали в кожну чашку і чашки поміщали на роторний шейкер на 2 години при швидкості 125 об/хв. Потім одну пробу суспензії 0,5 мл переносили на поживне середовище для B. bassiana і через 9 днів підраховували кількість КУО. Для кожної рослини відзначали суму КУО, доставлених на всю рослину і, конкретніше, кількість і пропорцію КУО на листі, де самки трипсу відкладали яйця.

Мал. 4 Кількість колонієутворюючих одиниць (КУО) B. bassiana, виділених з яєць трипсу (молоді проти старих) через 48 годин після початку експерименту на рослинах без (контроль) та з хижими кліщами, N. cucumeris або А. swirskii

Дані експериментів

У ході проведених дослідів були отримані такі дані, наведені на малюнках 3-6. Кількість КУО, зібраних з усієї рослини, значно різниться між обробками. Як A. swirskii, так і A. cucumeris сприяли збільшенню загальної кількості КУО на рослинах порівняно з контролем (Мал. 3). Одна рослина з контрольної обробки була виключена з аналізу, оскільки на одному аркуші висадилася надзвичайно велика кількість конідій (19800).

Взаємодія хижих кліщів з конидіями Beauveria bassiana

Було виявлено взаємодію між листом, у якому були відкладені яйця трипсу, та обробкою. Для A. swirskii кількість спор була більшою, коли яйця трипса відкладалися на молодий лист, ніж на старий. Amblyseius swirskii збільшував кількість КУО, виділених з листа, в якому були відкладені яйця трипса, порівняно з контролем та рослинами, на які виселяли A. Cucumeris (Мал. 4).

В ході експерименту було неможливо завантажити два види хижих кліщів з однаковою кількістю конідій. Таким чином оцінювали частку B. bassiana, доставлену до листа, в якому були відкладені яйця трипсів, двома видами хижих кліщів. Частка КУО, витягнутих з листа, в якому були відкладені яйця трипсів, варіювалася між обробками, при цьому A. swirskii збільшував частку B. bassiana на листі для відкладення трипсу в порівнянні з контролем, але не з A. cucumeris. Amblyseius swirskii доставляв значно більшу частку B. bassiana на лист, у якому трипс відкладав яйця, ніж A. cucumeris.

Мал. 5 Кількість трипсів, виділених на рослині через 48 годин після початку експерименту на рослинах без (контроль) та з хижими кліщами A. cucumeris або A. swirskii

Через сорок вісім годин після випуску хижих кліщів із рослин було вилучено більшу кількість A. swirskii, ніж A. cucumeris. Кількість трипсів, що залишилися на рослинах наприкінці експерименту, також варіювало між обробками (Мал. 5). Amblyseius swirskii сильніше знижував кількість трипсів на рослинах.

Результати проведеного дослідження показують, що A. swirskii та A. cucumeris мають здатність поширювати конідії B. bassiana на рослинах під час харчування. Однак A. swirskii ефективніший, ніж A. cucumeris, оскільки вони доставляють більшу кількість конідій у колонії трипсів.

Способи доставки конідій Beauveria bassiana на рослину

Є два основних способи, якими конідії можуть бути відокремлені від тіла хижого кліща та розпорошені по рослині. Їх можуть або активно прибирати кліщі під час чищення, або стираючи о поверхню рослини, коли хижі кліщі пересуваються. Чищення, за допомогою ніг, спостерігається у фітосеїдних кліщів, коли вони стикаються з потенційно патогенними грибами. Однак чищення неефективне видалення всіх конідій з тіла кліщів, особливо тих, які розташовані на спинних ділянках їх тіла. Також виявлено, що A. swirskii та A. cucumeris в основному видаляли конідії зі свого тіла, ходячи по поверхні рослини. Справді, тривалість ходьби впливає видалення конідій в обох видів. Трихоми та інші структури, пов’язані з поверхнею листя бобів, сприяють видаленню конідій при ходьбі кліщів (мал. 6В). Таким чином, хижі кліщі у пошуках їжі активно поширюють конідії B. bassiana у навколишньому середовищі.

Мал. 6 (A) Amblyseius cucumeris з конідіями Beauveria bassiana. (B) Amblyseius swirskii з конідіями Beauveria bassiana, випущеними на бобовий лист. Волоскоподібні структури являють собою щільні бобові трихоми.

Як можуть передаватися конидії Beauveria bassiana трипсам

За посередництва хижих кліщів передача конідій трипсу може бути пасивним або активним процесом. Конідії вивантажуються на поверхню рослин і можуть згодом пасивно прикріплюватися до кутикули трипсів, коли вони годуються на забрудненому субстраті. В якості альтернативи конідії можуть безпосередньо передаватися від хижих кліщів трипсам під час невдалого випадку хижацтва, що включає фізичний контакт між хижаком і жертвою. Присутність хижих кліщів у безпосередній близькості від колоній трипсів може проводити їх поведінка. Після виявлення хижаків трипси можуть перемикатися з постійного харчування на втечу, тим самим збільшуючи ймовірність контакту зі спорами, розсіяними на рослинах.

Розбіжності, що спостерігаються між A. swirskii і A. cucumeris в їх здатності поширювати конідії B. bassiana в колонії трипсів можуть виникати через відмінності в способах харчування хижаків. Як з’ясовано A. swirskii, пригнічував трипсів сильніше, ніж A. cucumeris в експериментальній установці. Різниця в пропорціях конідій, що доставляють у місця зосередження трипсів двома видами хижих кліщів, свідчить про кращу здатність A. swirskii вражати трипсів на квасоляних рослинах.

Важливість роботи конидій гриба Beauveria bassiana для захисту рослин від трипсів

Швидкість, з якою B. bassiana контактує зі своїм господарем, має вирішальне значення в контексті біологічного контролю не тільки тому, що вона безпосередньо пов’язана зі швидкістю зараження, але й тому, що життєздатність конідій дуже чутлива до умов навколишнього середовища, таких як УФ та вологість . У деяких випадках застосування B. bassiana як самостійного засобу контролю шкідників неефективне для боротьби з цільовими шкідниками. Наприклад, західні квіткові трипси часто ховаються в ущелинах рослин та бутонах. В результаті розпилення патогенних грибків мало впливає рівень зараженості трипсами. У таких обставинах здатність хижих кліщів доставляти хвороботворні мікроорганізми та грибки у колонії трипсів може збільшити передачу хвороби. У проведеному експерименті смертність трипсів після контакту з патогенами не оцінювалася. Тим не менш, було показано, що ЛД50 є відносно низькою для порошку B. bassiana технічної чистоти: приблизно 50 конідій на личинку F. occidentalis 2-го віку і лише 5 на дорослу особину.

Висновки про відносний потенціал A. swirskii та A. cucumeris у поширенні конідій Beauveria bassiana до трипсів

Були зроблені висновки, що в даних експериментальних умовах A. swirskii є найкращим засобом біологічної боротьби, оскільки він сильніше скорочує кількість трипсів і передає конідії більшій кількості трипсів, що рятуються від хижаків. Однак A. cucumeris може продемонструвати добрий потенціал як хижака, так і агента поширення ентомопатогенів при використанні в іншій асоціації сільськогосподарських культур та шкідників. Наприклад, у теплицях з регіонів з помірним кліматом було показано, що A. cucumeris показав такі ж характеристики, як і A. swirskii, як агент біоконтролю трипсів у змодельованих зимових умовах.

Як можна застосувати таку систему у програмі біологічного контролю?

Виробники випускають хижих кліщів та періодично обробляють рослини B. bassiana для боротьби з трипсами. Запропонована вченими стратегія не потребує двох окремих обробок, а потребує лише внесення конідій Beauveria bassiana (технічний порошок) у комерційну упаковку з хижими кліщами. Хижі кліщі збільшать швидкість передачі хвороб скритноживучим шкідникам. Загальний потенціал хижих видів кліщів як агентів поширення патогенів залежатиме від їхньої здатності бути навантаженим конідіями, їхньої здатності протистояти патогенним інфекціям та його активності у пошуках їжі. Хижі кліщі повинні бути тісно пов’язані з цільовим шкідником і мати можливість шукати, виявляти та взаємодіяти зі шкідниками на рослині, щоб вони могли розсіювати спори на рослині та на шкідників.

Автор перекладу: технолог із захисту рослин Компанії «Біо Захист»

Дорошенко Антон

Пошта: dav@bio-group.net

Телефон: +38 63 471 24 81

Macrolophus pygmaeus – особливості розвитку популяції

Останнім часом для захисту томату в теплицях все частіше використовується хижий клоп Macrolophus pygmaeus. Цей клоп є поліфагом, який в першу чергу харчується білокрилкою, в якості альтернативного джерела їжі може використовувати пилок, павутинного кліща, тлю і  трипсів. При харчуванні білокрилками його біологічна ефективність становить 80-90 %, попелицею – 40-50 %, павутинними кліщами – 20 %. Макролофус активно харчується як шкідниками, так і соком рослин. Помічено, що при переході на раціон з рослинної їжі кожна стадія клопа розвивається повільніше, а тривалість життя дорослих особин, що сформувалися з таких личинок, скорочується.

Macrolophus pygmaeus – фази розвитку

Личинки 4-5-го віку найбільш активні в харчуванні, дорослі особини менш ненажерливі. За добу одна особина знищує до 40 дорослих особин попелиці. Білокрилку макролофус знищує ще активніше. Одна особина клопа за життя здатна знищити 3200 яєць або 2500 личинок білокрилки. Личинки хижака починають розвиватися вже при +15 °С незалежно від вологості повітря. Період ембріонального розвитку становить 14-21 день. Тривалість личинкової стадії, в залежності від температури повітря, становить 18-25 днів (5 личинкових стадій). Максимальна тривалість життя самки – 54 дні (в середньому 30 днів). Тривалість життя самців в середньому становить 27 днів. Розвиток одного покоління хижака становить від 37 до 43 днів. Плодючість при цьому може варіюватися в різних межах від 24 до 117 яєць (в середньому 50-80 яєць). В одній кладці в середньому буває не більше 7-8 яєць. Відродження макролофуса з яєць становить в середньому 79 %, а виживання личинок – 85 %, за умови, що вони харчуються їжею, багатою амінокислотами (білокрилка, великі яйця ситотроги і ін.).

Macrolophus pygmaeus – годівля

Як вже говорилося вище, при відсутності шкідників або альтернативних кормів макролофус може перейти на харчування соком рослин, при цьому в 5 разів скорочується тривалість його життя, відповідно, і плодючості. Для забезпечення макролофусів кормом рекомендуємо використовувати поживну суміш «МакФуд» (MacFood). Для швидкого збільшення популяції макролофуса в теплиці при профілактичному виселенні такий раціон оптимальний. MacFood має збалансований склад поживних кормів, який складається з яєць ситотроги, артемії, вітамінів, амінокислот і біологічно активних речовин.

Макролофус, який розвивається на MacFood, має високу життєздатність. На розвиток клопа і тривалість окремих етапів істотно впливає якість харчування. В середньому відродження макролофуса з яєць становить 82 %, а виживання личинок – 89 %. Загальна життєздатність становить 73 %.

При використанні монокорму (яєць зернової молі), відродження макролофуса з яєць склало 65 %, виживання личинок – 71 %, а загальна життєздатність – 63 %. Плодючість самок макролофуса також відрізняється. При годуванні поживною сумішшю МакФуд плодючість самки маролофуса становить 59 яєць на одну самку, а при харчуванні ситорогою – 43 яйця.

Залежно від життєвої стадії макролофус має різний показник хижацтва. Аналіз був узятий з поїдання яєць ситотроги. Після відродження личинок клопа в день з’їдають по 10 яєць зернової молі на одну особину. Найбільш ненажерливі 4-5 німфальних стадій, в день з’їдається 81 яйце ситотроги. З чого можна розрахувати витрата ситотроги в таблиці нижче.

Таблиця для розрахунку споживання яєць ситотрогів макролофусом протягом життя

Тривалість життяСкільки днів існуєСкільки яєць споживає за деньВсього за період з’їдає яйця
Яйце8——
1 стадія31030
2 стадія42080
3 стадія440160
4 стадія781567
5 стадія281162
Імаго30501500

На підставі даних цієї таблиці можна розрахувати норми використання корму для макролофуса в теплиці. Середнє споживання становить 47 яєць/день, а максимальне – 81 яйці ситороги в день. Приблизно 50 000 яєць міститься в одному грамі ситотроги. Для розрахунку візьмемо площу теплиці площею 1 га, культура – томат.

Норма заселення макролофуса особин/гаСереднє споживання яєць/день на 1 гаСпоживання грам ситотрогиМаксимальне споживання яєць/день на 1 гаСпоживання грам ситотроги
деньтижденьденьтиждень
10 000470 000966810 00016113
15 000705 00014991 215 00024170
20 000940 000191321 620 00032227

Норми годівлі Macrolophus pygmaeus

Аналізуючи дані таблиці, можна зробити висновок, що в залежності від щільності первинного виселення макролофуса на 1 м2 змінюються норми використання кормів. При виселенні однієї особини хижого клопа на квадратний метр в тиждень потрібно вносити від 66 до 113 грам корму на гектар в тиждень. Тому потрібно планувати прийом від 282 до 484 грам ситотроги в місяць. Для зручності рахунку потрібно мінімум 250 грам, а максимум 500 грам МакФуду в морозилці на місяць на 1 га помідор повинні бути в розпорядженні агронома.

При щільності заселення макролофуса в 2 особини/м2 необхідно застосовувати корм в межах від 132 до 227 грам ситотроги/тиждень. Відповідно, запас корму на місяць на 1 гектар томату повинен становити від 565 до 972 грам. Для зручності підрахунку необхідно в середньому 0,5-1 кг/місяць МакФуду.

З огляду на особливість макролофуса при високій щільності пошкоджувати томат і період росту культури, необхідно обмежити тривалість підгодівлі. Тому підгодівлі досить протягом 10-12 тижнів. Щоб вирішити, чи потрібно продовжувати підгодовувати макролофуса, потрібно звернути увагу на наявність пошкоджень рослин і наявність шкідника. Припиняти годування раніше не рекомендується, так як поголів’я недостатньо збільшилося. Така стратегія внесення і підгодівлі макролофуса потребує корегування при вирощуванні томатів черрі, перцю і баклажанів. На таких культурах стратегія інша.

Графік залежності швидкості розвитку макролофуса від типу раціону

Припинення внесення їжі зрівняє популяцію макролофуса і попередить пошкодження ним рослин, а також забезпечить достатню концентрацію хижака для запобігання розвитку шкідників. При виявленні пошкодження томатів макролофусом зверніться до технолога для спільного затвердження плану часткової корекції популяції хижака.

Автор статті: Провідний спеціаліст компанії “Біо Захист”

Дохторук Андрій

Пошта: dam@bio-group.net

Телефон: +38 (093) 625 84 65

Transeius (Amblyseius) montdorensis – універсальний хижий кліщ

Трансейюс (амблісейюс) монтдоренсіс – це універсальний хижий кліщ, який харчується трипсами, білокрилками, кліщами і дрібними комахами. Як і інші широко поширені хижі кліщі, він також може харчуватися пилком.

Розвиток популяції Amblyseius montdorensis

Зростання популяції монтдоренсіса залежить від температури, відносної вологості, характеру і наявності здобичі, а також інших джерел їжі. Низька вологість негативно позначається на кладці і вилуплення яєць, виживанні личинок, тривалості життя дорослих особин і часу розвитку популяції.

Розвиток від стадії яйця до дорослої особини займає 22 дні при 15 °С і близько 6 днів при 27 °С. При 30 °С розвиток займає 8 днів, а при 35 °С кліщі не розвиваються зовсім. При температурі 10 °С перетворення у дорослу особину також не відбувається.

Парування необхідно для розмноження у хижих кліщів. 60-70 % популяції представлено самками. Яйця монтдоренсіса чутливі до низької вологості. При 25 °C вилуплюється лише 50 % яєць. Однак низька відносна вологість повітря в теплиці не обов’язково негативно позначається на популяції хижих кліщів. У здорових і добре зрошуваних рослин мікроклімат, близький до листової поверхні (в так званому прикордонному шарі, де живуть кліщі), зазвичай більш вологий, ніж вологість навколишнього повітря, завдяки транспірації. Як і інші хижі кліщі, що харчуються білокрилками, монтдоренсіс універсальний, також він може харчуватися трипсами, кліщами, іншими дрібними комахами і пилком. Кліщі виживають на цих джерелах їжі при відсутності білокрилок. Крім того, популяція краще розвивається при змішаному харчуванні, ніж на одному джерелі.

Зимівля Amblyseius montdorensis

Montdorensis не входить в діапаузу. Так, кліщі погано переносять суворі зими за межами теплиць в районах помірного клімату. Ця особливість також дає можливість ефективно використовувати монтдоренсіс профілактично на початку зимово-весняного обороту.

Харчова поведінка Amblyseius montdorensis

Хижі кліщі проколюють свою здобич і висмоктують вміст. Крім білокрилок, монтдоренсіс полює на інші дрібні організми, такі як трипси, павутинний кліщ і тарсонеміди (суничні прозорі кліщі). Також монтдоренсіс харчується пилком, наприклад, на солодкому перці, де хижак може оселитися на культурі ще до появи шкідника.

Монтдоренсіс в основному полює на молоді (білі) яйця, гусениць і другу личинкову стадію білокрилок. При 25 °С за оптимальних умов доросла самка відкладає приблизно 2 яйця, якщо в якості здобичі виступає теплична білокрилка.

Життєвий цикл і зовнішній вигляд Amblyseius montdorensis

Життєвий цикл монтдоренсіса складається з наступних стадій: яйце, личинка, протонімфа, дейтонімфа і доросла особина. Яйця відкладаються на нижньому боці листків, часто в пазусі біля жилок. Вони овальні, білі, діаметром близько 0,14 мм. У личинок шість ніжок, вони того ж кольору, що і яйця, тільки трохи більше за розміром.

Личинки мондоренсіса потребують їжі, в разі її відсутності розвиток відбувається повільно і смертність серед них висока. Німфи крупніше личинок за розміром, у них 8 ніг. Колір білувато-жовтий. Дорослі особини мають 8 ніг, напівпрозоре плоске витягнуте тіло білого кольору, довжиною приблизно 0,4 мм. Кліщі дуже рухливі і активно шукають їжу на нижньому боці листків. Їх забарвлення може варіюватися в залежності від жертви, від майже прозорого білуватого до непрозорого білого або жовтого. Через їхні розміри і забарвлення їх складно знайти на культурі.

Клоп трав’яний (Lygus spp.)

Огляд наукової літератури про сліпняків трав’яних лігусів, що викликають гормональний дисбаланс та зміну вегетативного росту рослин: зниження росту стебел та збільшення росту бічних пагонів, а також деформацію плодів та насіння.

Таксономія сліпняків трав’яних лігусів Lygus

Клопи-сліпняки роду Lygus Hahn, 1833 відносяться до триби Трав’яних клопів Mirini Hahn, 1831; до підродини Mirinae Hahn, 1831 [1]; до сімейства Сліпняків Miridae Hahn, 1831.

Сімейство Сліпняки (Miridae) входить до складу надродини Мироподібні (Miroidea), інфразагону Цимікоморфні клопи (Cimicomorpha Leston, Pendergrast et Southwood, 1954), підряду Клопи (Heteroptera), загону Напівжорсткокрилі (Hemiptera Latreille, 1810), підкласу Комахи (Insecta), класу Шестіногі (Hexapoda).

На Землі зареєстровано 164 номінальних видів роду Lygus, з них в Палеарктиці – 21 вид [2, 3], в Європі – 7 видів [3]:

  • Lygus rugulipennis Poppius, 1911 – клоп трав’яний;
  • Lygus pratensis (Linnaeus, 1758) – клоп польовий;
  • Lygus gemellatus (Herrich-Schaeffer, 1835) – лігус полинний;
  • Lygus wagneri (Poppius, 1911);
  • Lygus punctatus (Zetterstedt, 1838);
  • Lygus monticola (Aglyamzyanov, 2009);
  • Lygus orientis (Aglyamzyanov, 2009).

Тільки перші два види, будучи поліфагами, здатні проникати в тепличні споруди, де пошкоджують овочеві та квіткові культури. У цьому Lygus rugulipennis – як найпоширеніший, а й найбільш масовий і шкідливий вид [4].

Lygus rugulipennis Poppius, 1911 – трав’яний клоп

Базіонім (назва, дана виду при його первісному описі): Lygus rugulipennis Poppius, 1911 [5] (ruga=зморшка, penna=крило, тобто зморщенокрилий). Вперше вигляд описаний Поппіусом з Фінляндії.

Відомі синонімічні назви:

Валідна назва – Lygus rugulipennis Poppius, 1911.

Згідно до Code EPPO (European and Mediterranean Plant Protection Organization) клоп опушений Lygus rugulipennis кодується як LYGURU.

Поширення клопа-сліпняка Lygus Hahn

Lygus rugulipennis має Голарктичний ареал. У Неарктиці (Північна Америка) поширений від Аляски до півночі Каліфорнії та півдня Колорадо [6]. У Палеарктиці вид відзначений від Великобританії та Іспанії до Далекого Сходу росії та Японії [7, 8].

Морфологія клопа-сліпняка Lygus

Імаго клопа-сліпняка

Дорослі L. rugulipennis середніх розмірів зі сплощеним овальним тілом (мал. 1). Довжина тіла самок 5,7 мм, самців 4,7 мм. Тіло вкрите тонким пушком. Забарвлення тіла залежить від статі та пори року. Основними кольорами загального забарвлення є сіро-зелений, бурий або чорнуватий. Зазвичай самки забарвлені світліше за самців. Передньоспинка і надкрила більш менш виразно пунктировані.

Зовніншній вигляд імаго клопа-сліпняка

Голова майже вертикальна, спереду виглядає більш-менш трикутною; часто (особливо у самців) з темно-бурим, рудим або темно-червоним мінливим малюнком. Задній край тімені з виразним поперечним реберцем. Лоб гладкий, без борозенок, блискучий. Верхня половина лиштви не прикрита щоками, добре видна збоку. Очі крупні. Внутрішній край ока сильно увігнутий.

Вусики тонкі, довші за половину тіла, густо опушені короткими сріблястими волосками; прикріплені трохи вище від нижнього краю очей. 3-й членик вусиків коротший за 2-й. Довжина другого членика вусика більша за ширину голови.

Передньоспинка трапецієподібна, передній край її виразно відділений глибокою поперечною борозенкою у вигляді вузького опуклого шийного кільця. Передньоспинка в передній частині з двома невеликими слабо виступаючими роз’єднаними мозолистими підвищеннями. Задній край передньоспинки в 1,6-2,3 раза ширший за голову.

Щиток трикутний. Його основа цілком прикрита заднім краєм передньоспинки. Передньоспинка і щиток з темним малюнком. Малюнок передньоспинки часто дуже мінливий. На щитку він менш варіабельний, здебільшого у вигляді тупокутної плями, повної або неповної літери “W” або пари симетричних трикутних плям, розташованих уздовж середньої лінії.

Надкрила як визначник виду

Надкрила заходять за вершину черевця. Вони чітко розділені борозенками на ділянки – клавус, коріум, кунеус і перепоночку. Коріум із трьома жилками. Назовні від коріума розташовується емболіум. Кунеус по зовнішньому краю відмежований від коріума маленькою вирізкою. У Lygus rugulipennis надкрила густо опушені, окремі волоски частково перекривають один одного. Перетинка темно-сіра, з двома комірками: великою і малою.

Ноги досить довгі та стрункі, зі зближеними тазиками. Задні стегна трохи вужчі за тім’я. Вершини стегон з двома бурими кільцями, які можуть бути незамкненими. Зовнішній бік гомілок з бурою плямою на коліні та ще однією бурою плямою (інколи кільцем) дистальніше за першу. Щетинки на гомілках чорні. Вершини гомілок і лапки темно-бурі. Лапки тричленникові.

Мал. 1. Доросла особина клопика опушеного Lygus rugulipennis [ориг.]:
А) на листі баклажана; Б) на пелюстці соняшника

Генітальний сегмент самця у формі округленого конуса, лежить на вершині черевця, не втягнутий у попередні сегменти. Генітальний отвір на спинному боці. Едеагус у спокої втягнутий усередину. З боків від нього розташовані парамери, які сильно відрізняються один від одного за формою. Лівий парамер більший за правий. Його гіпофіз сплющений у вершинній частині, чутливий горбок короткий, густо обсаджений зубчиками (мал. 2, А). Гіпофіз правого парамера вигнутий майже під прямим кутом, тіло парамера посередині довжини з неглибокою перетяжкою; в основі з горбком, що сильно стирчить (мал. 2, Б). Спікула едеагуса не потовщена до вершини (мал. 2, В).

Мал. 2. Генітальний апарат самця клопика опушеного Lygus rugulipennis [ориг.]:
А) лівий парамер; Б) правий парамер; В) спікула едеагуса

Яйце клопа-сліпняка

Яйця лігуса білуваті, злегка вигнуті, близько 1,7 мм завдовжки і 0,5 мм завширшки. Самка за допомогою зазубреної яйцекладки вставляє кожне яйце в рослинну тканину, частіше при основі листових черешків. Верхня частина яйця сплющена у вигляді кришечки; через неї вилуплюється личинка. Ембріогенез триває протягом 6-14 днів залежно від температури.

Личинки та німфи клопа-сліпняка

Клопи проходять через п’ять вікових груп, перш ніж стати дорослими. У стадії личинки мають 3 віки; вони зеленуваті з червоними вусиками і можуть бути помилково ідентифіковані як попелиці. У міру дорослішання, у стадії німфи (IV і V вік) у них розвиваються чотири подушечки (зачатки) крил і п’ять чорних плям на грудях і черевці. Загальний час розвитку всіх п’яти вікових груп коливається від 15 до 30 днів.

Німфа IV віку зеленувата (мал. 3, А). Німфа V віку (мал. 3, Б) з валькуватим тілом: довжина 3,7-4,4 мм, ширина 1,9-2,2 мм [5]. Голова завширшки 1,0 мм, тім’я – 0,5 мм. Лоб посередині з бурою смужкою. Очі бурі, іноді з рудим відтінком. Вусики 4-х членикові; 1-й і 2-й членики вусиків світліші; 3-й і 4-й – темніші; довжина члеників вусиків (мм) 0,5, 1,3, 0,8, 0,7. Передньоспинка буро-зелена, з двома зближеними чорними крапками. Довжина передньоспинки 0,7 мм, ширина в основі – 1,4 мм. Щиток з бурим малюнком, з двома розставленими чорними крапками. Зачатки надкрил світло-бурі. Черевце блідо-зелене. 2-3-й черевні тергіти вздовж середньої лінії з округлою жовтою плямою перед перитремою пахучої залози. На 3-му тергіті розташована одна чорна пляма.

Мал. 3. Клопик опушений Lygus rugulipennis на листі баклажану:
А) німфа IV віку; Б) німфа V віку (ориг.)

Життєвий цикл клопа-сліпняка

Зимує клопик опушений Lygus rugulipennis у дорослій стадії переважно в лісовій підстилці та в гілках хвойних дерев, розташованих близько до землі.

Вид унівольтинний у Фінляндії [9]: клоп мігрує на культивовані поля в середині або наприкінці травня, відкладання яєць починається наприкінці травня, дорослі особини з’являються наприкінці липня або серпні.

У Північній Європі та Північній Америці Lygus rugulipennis є бівольтинним.

У Південній Європі (Італія) клопик розвивається в 3-х поколіннях [10].

Особливості харчування клопа-сліпняка Lygus

Lygus Rugulipennis домінує на заболочених ділянках, на заплавних луках малих річок, зволожених ділянках, узліссях листяних і соснових насаджень; найчисельніший на перелогових ділянках та необроблюваних полях і ділянках з рудеральною рослинністю; доволі чисельний на посівах сільськогосподарських культур (люцерна, конюшина та ін.) [3].

Маючи голарктичне поширення, цей високополіфаговий вид широко поширений як на трав’янистих, так і на деревних дикорослих рослинах і культурах, і його було зареєстровано на понад 320 рослинах-господарях [11].

На східноєвропейській території польові клопи як кормові використовують 257 видів рослин, що належать до 44 родин.

В умовах середньоруського лісостепу L. rugulipennis віддає перевагу суріпиці звичайній Barharea vulgaris; меншою мірою до полину гіркого Artemisia absinthium і злаків [12].

У Швеції L. rugulipennis віддає перевагу Matricaria perforata, Trifolium medium (L.) і Urtica dioica. у Німеччині L. rugulipennis відзначається на Senecio vulgaris L., Capsella bursa-pastoris Med., Thlaspi arvense L., Atriplex patula L., Matricaria L. sp., Urtica dioica.

Підкреслюється важлива роль бур’янів для польових клопів, які слугують для відкладання яєць, а також кормовими рослинами для личинок. Перед зимівлею L. rugulipennis харчуються на хвойних або листяних деревах, особливо на Corylus avellana L. і Quercus L. sp., а також на Calluna vulgaris (L.) Hill. Після зимівлі головними кормовими рослинами стають Vaccinium myrtillus L., Padus avium Mill., Ribes alpinum, Quercus L. і Salix L.

Особливість розмальовки тіла клопа-сліпняка Lygus

Зміна забарвлення спостерігається протягом життєвого циклу і за сезонами року, спостерігаються також деякі відмінності в забарвленні самців і самок. Загальну закономірність у зміні забарвлення L. rugulipennis і L. pratensis зі Швеції виявив Б. Кленберг (Kllenberg, 1946). За його спостереженнями молоді імаго світлі, мають зелене або жовте забарвлення. Потім з’являється червонуватий або червонувато-бурий колір. Перед зимівлею комахи стають темними, а навесні зимові кольори бліднуть. Самці світлішають повільніше й іноді залишаються яскраво забарвленими до самої смерті.

Молоді імаго L. rugulipennis і L. pachycnemis сірувато-зеленого кольору. Потім з’являються темні та буруваті тони, виражені більшою мірою у самців. Крім того, у L. rugulipennis до загального колірного фону включається червонуватий колір (Аглямзянов, 1990). Причини мінливості чорного малюнка до кінця не з’ясовані. Досліджені Е. Вагнером (Wagner, 1949) темні екземпляри були особинами літнього покоління, які недавно линяли. Він виділяв їх як форми, наприклад L. rugulipennis f. obscura. Зібрані Р.С. Аглямзяновим (1990) особини L. rugulipennis з “аномально” розвиненим малюнком на передньоспинці також були літнього покоління.

У L. rugulipennis М. Бонесс (1963) відзначив зворотну залежність між площею чорного малюнка та температурою. У його дослідженнях темний пігмент з’являвся у комах, які розвивалися за порівняно низьких температур (+15 °С).

Біологічні особливості клопа Lygus

Таблиця. Біологічні особливості клопика трав’яного (Lygus rugulipennis) при харчуванні стручками зеленої квасолі (температура 25±1°C, відносна вологість повітря 50-60 %, фотоперіод 14L:10D) [13]

Стадія розвиткуСередній час розвитку, діб
Яйце10,1
Личинка I3,3
Личинка II2,6
Німфа III2,8
Німфа IV2,9
Німфа V4,1
Усього (постембріональні стадії)15,7
Тривалість життя самки52
Тривалість життя самця38
Плодючість140-190
Тривалість відкладання яєць25-43

Шкодочинність клопа Lygus

Клопи Lygus використовують дію “рваної рани і 20 мацерацій”, щоб викликати травму: рослинні тканини свердлять або рвуть, а потім слину вводять у тканину з подальшою ферментативною дією (мацерацією) і подальшим висмоктуванням клітинного вмісту.

Найбільш важливими секретованими ферментами, виявленими в слинних залозах Lygus rugulipennis, були полігалактуроназа, α-амілаза і лужні протеїнази [14]. Полігалактуроназа є ферментом, насамперед відповідальним за травлення рослинних тканин.

Полігалактуроназа в слині Lygus являє собою пектиназу, яка ферментативно перетравлює клітинні стінки рослин шляхом солюбілізації (колоїдний процес проникнення) середньої ламелі клітинної стінки.

Як тільки клітинні стінки зруйновані, α-амілази та протеази допомагають в екстра-пероральному перетравленні клітинного вмісту.

Трегалази детоксифікують алелохімічні речовини рослин, пригнічуючи механізми захисту рослин.

Переважне харчування клопів Lygus на меристематичних тканинах може призвести до гормонального дисбалансу, що виникає в результаті локалізованої травми в місці харчування. Гормональний дисбаланс призводить до зміни вегетативного росту, такого як зниження росту стебел і збільшення росту бічних пагонів, а також морфологічна деформація плодів або насіння.

Через важливу роль, яку ауксини відіграють у регуляції абсцисії (скидання органів рослини) плодоносних структур, абсцисія цих структур може відбуватися внаслідок руйнування тканин, що продукують ауксин-22, у меристематичних тканинах під час харчування клопом Lygus.

Встановлено, що харчування Lygus продукувало менше абсцисії квіток, коли рослини обробляли позакореневим ауксином і нафталін оцтовою кислотою [15].

Коли лігусні клопи присутні у великій кількості, налив насіння та дозрівання можуть бути зменшені майже на 100 %. Німфи та дорослі особини атакують стебла та репродуктивні частини рослин (мал. 3). Під час харчування клопи-лігуси можуть вводити токсичну слину в рослину і спричиняти відмирання та опадання насіннєвих структур з рослини. Навіть помірне харчування може призвести до передчасного скидання бруньок, деформованого насіння та зниження життєздатності насіння.

Мал. 4 Пошкодження від клопа, баклажани осінні (другий оборот) Бйонсе.

Мал. 5 Зав’язь баклажана, готова відвалитися [ориг.] Пошкодження клопом завдано у стадії бутонізації.

Заходи боротьби з клопом Lygus

Пестицидні обробки мають бути відкладені доти, доки не буде завершено вилуплення з яєць, але до того, як німфи досягнуть IV-V віку.

В Аризоні було протестовано 11 пестицидів [16], але жоден із них не був ефективним проти дорослих Lygus, тоді як деякі хімічні речовини були дуже ефективні на всіх стадиях розвитку німф. Orthene® і Vydate® показали хороші результати проти Lygus, але були недостатньо ефективні.

Найефективнішим інсектицидом проти Lygus був флонікамід (Teppeki®), що розробляється FMC. Цей інсектицид мав найкращий контроль над німфами Lygus, був найвисокопродуктивнішим і потребував на одну обробку менше, ніж інші найефективніші сполуки. Серед нових хімічних речовин для контролю Lygus був фіпроніл (Regent®), який працював трохи краще, ніж Vydate®, але був не такий ефективний, як Orthene®. З неонікотиноїдів динотефуран (Valent®) показав хорошу активність. Продуктивність спіромезифіну (Оберон®) була схожа на динотефуран, але потребувала одного розпилення менше.

У польових дослідженнях на суниці проти місцевого виду Lygus hesperus (Каліфорнія) було показано вплив флонікаміду (Beleaf® 50 SG) за нормою 199,6 грам препарату/га. Встановлено, що препарат має помірне пригнічення чисельності як імаго, так і німф клопа при дворазовій обробці протягом 2-х тижнів [17]. У цих же дослідженнях препарати на основі тіаметоксаму та фенпропатрину виявили низьку ефективність.

Біологічний метод боротьби. Ентомофаги проти клопів Lygus

Відомо, що в Європі на Lygus rugulipennis паразитують три види Peristenus (Hymenoptera: Braconidae: Euphorinae) – Peristenus rubricollis (Thomson, 1891), Peristenus digoneutis Loan, 1973 і Peristenus stygicus Loan, 1973 [18].

Види Peristenus відкладають яйця в молодих личинок мірид. Дорослі личинки паразитоїда з’являються або в V стадії клопа, або в дорослих особинах, де й заляльковуються. Розвиток паразитоїдів досить тривалий. Наприклад, у P. rubricollis потрібно 47 днів від відкладання яйця до заляльковування. Найвищий рівень паразитування спостерігається в другій половині липня і першій половині серпня. Життєвий цикл паразитоїда, мабуть, синхронізований з розвитком Lygus.

У Канаді Lygus rugulipennis, має два покоління німф на рік, перше з яких зазвичай характеризується нижчим рівнем паразитації (4-27 %). У середньому рівень паразитизації у другого покоління німф вищий за 32 %, зрідка досягаючи понад 60 %. Peristenus digoneutis домінує в місцях зростання конюшини, тоді як на ромашкових насадженнях P. stygicus і P. digoneutis з’являються з однаковою частотою [19].

Також було зареєстровано, що на яйцях Lygus rugulipennis паразитують Anaphes fuscipennis Haliday, 1833 (Hymenoptera: Mymaridae) [20].

З питань біологічного захисту рослин у теплицях, розробки проєктів захисту, впровадження IPM методу звертайтеся до технологів компанії Біо Захист.

Список основних джерел

[1] Die Miridae Hahn, 1831, des Mittelmeerraumes und der Makaronesischen Inseln (Hemiptera, Heteroptera). E Wagner and HH Weber, 1970.

[2] Aglyamzyanov R. Revision der paläarktischen Arten der Gattung Lygus Hahn, 1833 (Heteroptera: Miridae) // Dissertation. http://doi.org/10.25358/openscience-4163 // Entomologische Zeitschrift mit Insekten-Börse. – 2009. – Vol.119. – No. 6. – P. 249-276.

[3] Демченко Н. Ю. Фауна и экология полужесткокрылых насекомых рода Lygus Hahn (Heteroptera, Miridae) европейской части России / Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук. – Воронеж. – 2004. – 20 с.

[4] Пучков В. Г. Главнейшие клопы-слепняки – вредители сельскохозяйственных культур / Киев: Наукова думка. – 1966. – 172 с.

[5] Poppius B. Eine neue Lygus-Art aus Finland // Meddelanden af Societas pro Fauna et Flora Fennica. via Catalogue of Life. – 1911. – T. 37. – S. 96-98.

[6] Schwartz M. D., Foottit R. G. Revision of the Nearctic Species of the Genus Lygus Hahn, with a Review of the Palaearctic Species (Heteroptera: Miridae) // Memoirs on Entomology, International. Gainesville, Florida, U. S. A.: Associated Publishers. – 1998. – Vol. 10. – 428 p.

[7] Kerzhner I. M., Josifov M. Family Miridae Hahn, 1833. Cimicomorpha II. / In: B. Aukema, Ch. Rieger (eds.). Catalogue of the Heteroptera of the Palaearctic Region // Amsterdam, The Netherlands: The Netherlands Entomology Society/ – 1999. – Vol. 3. – 577 p.

[8] Винокуров Н. Н., Канюкова Е. В., Голуб В. Б. Каталог полужесткокрылых насекомых (Heteroptera) Азиатской части России / Новосибирск: Наука. – 2010. – 320 с.

[9] Varis A.L. The biology of Lygus rugulipennis Popp. (Het. Miridae) and the damage caused by this species to sugar beet // Annales Agriculturae Fenniae. – 1972. – Vol. 11. – N. 156. – S. 1-56. http://urn.fi/URN:NBN:fi-fe2014102745943

[10] Pansa M.G., Guidone L., Tavella L. Distribution and abundance of nymphal parasitoids of Lygus rugulipennis and Adelphocoris lineolatus in northwestern Italy // Bulletin of Insectology 2012. – Vol. 65. – N. 1. – P. 81-87,

[11] Holopainen J.K. Host plant preference of the tarnished plant bug Lygus rugulipennis Popp. (Heteroptera, Miridae) // J. Appl. Entomol. – 1989. – Vol. 107. – P. 78-82.

[12] Демченко Н.Ю., Голуб В.Б. Экологические особенности Lygus pratensis L. и L. rugulipennis Popp. (Heteroptera, Miridae) в условиях лесостепи и севера степной зоны европейской части России // Состояние и проблемы экосистем среднерусской лесостепи. — Воронеж, 2003. (Тр. учеб.-науч. центра Воронеж, гос. ун-та «Веневитиново»; вып. 16). — С. 44-51.

[13] Salerno G., Frati F., Conti E., Bin F. Influence of different diets and oviposition substrates on Lygus rugulipennis biology (Heteroptera: Miridae) // Eur. J. Entomol. – 2007. – Vol. 104. – P.  417-423. – DOI: 10.14411/eje.2007.061

[14] Laurema S., Varis A.-L., Harri M. Studies on enzymes in the salivary glands of Lygus rugulipennis (Hemiptera, miridae) // Insect Biochemistry. – 1985. – Vol. 15. – Is. 2. – P. 211-224. – doi.org/10.1016/0020-1790(85)90010-1

[15] Fisher E.H., Riker A.J., Allen T.C. Bud, blossom, and pod drop of canning string beans reduced by plant hormones // Phytopathology. –  1946. – Vol. 36. – P. 504-523.

[16] Barkley V., Ellsworth P.C. Search for Effective Chemical Controls for Lygus Bugs and Whiteflies in Arizona Cotton // Arizona Cotton Report (P-138). – 2004. – P. 186-205. – www.researchgate.net/publication/253652617

[18] Joseph S.V., Bolda M. Efficacy of insecticides against Lygus hesperus Knight (Hemiptera: Miridae) in the California’s Central Coast strawberry // International Journal of Fruit Science. – 2016. – Vol. 16. – Is. supl: Proceedings of the 2015 North American Strawberry Symposium Submit an article Journal homepage. – P. 178-187. – doi.org/10.1080/15538362.2016.1219293

[19] Haye T. Studies on the ecology of European Peristenus spp. (Hymenoptera: Braconidae) and their potential for the biological control of Lygus spp. (Hemiptera: Miridae) in Canada // Aus dem Zoologischen Institut –Zoophysiologie. – Dissertation zur Erlangung des Doktorgrades der Mathematisch-Naturwissenschaftlichen Fakultät der Christian-Albrechts-Universität zu Kiel vorgelegt von. – Kiel, Mai 2004

[20] Bilewicz-Pawi´nska T. Plant bugs (Heteroptera, Miridae) and their parasitoids (Hymenoptera, Braconidae) on cereal crops // Polish Ecol. Studies. – 1982. – Vol. 8. – P. 113-191.

Тута абсолюта – ефективні методи боротьби

Існує багато способів боротьби з американською мінуючою міллю (Tuta absoluta). Але для правильної стратегії контролю необхідно продовжувати вивчати її біологічні особливості та екологічні аспекти можливих причин виникнення проблем.

Шкідник – це умовне позначення організмів, які завдають шкоди культурам, призводячи до економічних збитків. У природному середовищі, де екосистеми не схильні до сильних впливів людини, всі трофічні ланцюжки знаходяться в динамічній рівновазі. Це забезпечується наявністю великої кількості різноманітних ланок трофічної піраміди: рослини – фітофаги (шкідники) – хижаки. Чим більше видів на кожному рівні, тим стійкішою є екосистема. У таких екосистемах йде природна конкуренція та взаємодія між кожним організмом. Рослини між собою конкурують за можливість розвиватися, фітофаги живляться тими чи іншими видами рослин, а хижаки контролюють чисельність фітофагів.

Теплиці – це агроценози, де переважає вирощування монокультур (один вид рослин), які цікаві у сільському господарстві. Такі екосистеми є відкритими, оскільки на їхній території відсутня рівновага між усіма ланками трофічної піраміди. Де є монокультура – ​​там неодмінно буде шкідник. І оскільки в теплиці немає хижаків, фітофаг не контролюється і починає розмножуватися дуже швидко, завдаючи шкоди культурі. Тому дуже важливо врівноважувати екосистему в теплиці, використовуючи хижаків.

Важливим фактором, за яким відносять шкідників до карантинних видів – це екологічна пластичність. Цей термін означає високий рівень пристосування до нових чинників середовища. Кліматологи вже зараз показують, що потепління йде і, відповідно, міграція шкідників розширюється.

Розглянемо, чому тута абсолюта є карантинним шкідником №1 на томаті:

  1. Тута абсолюта має дуже сильний генетичний апарат, що дозволяє шкідникові швидко виробляти стійкість до всіх відомих інсектицидів.
  2. При використанні важких хімікатів відмічено інтенсивніше розмноження шкідника.
  3. Личинки у листі здатні зменшувати швидкість поїдання паренхіми при використанні системних препаратів, що дозволяє довше виживати гусеницям.
  4. Сильно пошкоджене листя має слабку циркуляцію рослинних соків, що теж зменшує надходження потрібної дози препарату до шкідника та зменшує ефективність застосовуваних препаратів.
  5. Одна самка здатна відкласти за життя до 200 яєць, тому зростання популяції відбувається дуже швидко в геометричній прогресії, даючи 10-12 поколінь за сезон.
  6. Тута абсолюта може виживати в широкому діапазоні температур, а лялечки здатні пережити в ґрунті та рослинних рештках морози за межами теплиці.
  7. Шкідник має високу пошукову здатність тому встановлення сіток з дрібною коміркою на фрамугах у теплиці від міграції із зовнішнього середовища не зупиняє міль, оскільки тута абсолюта, відчуваючи запах томатів, сидить на сітках та відкладає яйця на неї, які надалі опадають на культуру.
  8. Онтогенез тути абсолюти складний і шкідник веде прихований спосіб життя: личинки живуть переважно в листі, стеблах та плодах, де недоступні для ентомофагів та препаратів, а лялечки також недоступні для контролю.
  9. Шкідник здатний розмножуватися і зберігати свою популяцію на всіх пасльонових культурах (картопля, баклажан, перець, томат, паслін чорний, тютюн, дурман тощо.).

Як боротися з тутою абсолютою?

Цикл развития туты абсолюты

Карантин та механічний контроль тути абсолюти

Для контролю тути абсолюти потрібно підходити системно та витримувати суворі карантинні заходи. Розуміючи біологію шкідника, необхідно ефективніше підходити до розробки стратегії захисту у теплиці. Потрібно використовувати якомога більше інструментів контролю, націлених на конкретні стадії розвитку шкідника. При виявленні пошкодженого листя необхідно його механічно обривати та складати в поліетиленовий пакет, з подальшою утилізацією за межами теплиці. Це дозволить зменшити швидкість розмноження шкідників.

Ловушки против туты абсолюты

Феромонні пастки Zentinel від тути абсолюти

Для контролю дорослих особин шкідника слід використовувати феромонні пастки та феромон Zentinel. Це дозволить відловити самців та зменшити кількість відкладених запліднених яєць. З незапліднених яєць виходитимуть самці, які після досягнення дорослої стадії будуть виловлені на феромонні пастки. Для моніторингу шкідника достатньо використовувати 4-6 дельтоподібних пасток на гектар. Кожні 4-5 тижнів потрібно міняти феромон. Для масового вилову слід використовувати феромонні миски, наповнені водою з додаванням ПАР, які не мають запаху. Такі пастки встановлюються на підлогу. Норма застосування 40 пасток/га. Новий феромон необхідно додавати кожні 4-5 тижнів для безперервного приваблення та дезорієнтації шкідника.

Трихолаин Биолаин

Біологічний контроль яєць тути абсолюти спеціальною трихограмою

Розуміючи життєвий цикл тути абсолюти необхідно враховувати, що при моніторингові перші дорослі особини шкідника відкладатимуть яйця. Для контролю яєць шкідника необхідно використовувати особливий вид трихограми – Трихограма ахея (Trichogramma achaeae). Це паразитоїдна оса, яка контролює виключно яйця шкідників. Цей продукт доступний у лінійці компанії Bioline Agrosciences у вигляді картонних карток (диспенсерів) Tricholine Tuta.

Трихолаин тута презентация

Норма використання 100-200 карток/га/тиждень.Трихограма у цьому продукті має яйця 2-х вікових груп, тому кожна картка працює пролонговано до 2-х тижнів. Як тільки у феромонних пастках виявляються перші особини шкідника – потрібно вносити трихограму. Для досягнення стійкого результату необхідно щотижня використовувати 100 карток/га. При великій кількості тути абсолюти норми внесення потрібно збільшити до 200 карток/га. Важливо розуміти, що яйця тути абсолюти дуже дрібні і трихограма не здатна після зараження таких яєць повністю завершити свій життєвий цикл, тому із заражених яєць доросла трихограма не виходить. На кожен новий спалах шкідника потрібно знову використовувати даного ентомофага. Стратегічно правильно використовувати трихограму на початку сезону як допомогу основному хижакові – Macrolophus pygmaeus.

Макролофус против Туты Абсолюты

Використання ентомофагів – макролофусу проти тути абсолюти

Як раніше було сказано, тута абсолюта дуже швидко виробляє резистентність до ісектицидів, тому потрібно використовувати хижаків. Найбільш ефективним себе зарекомендував макролофус. Важливо правильно застосовувати. Норми виселення – 5 особин/м2. Також потрібно правильно розвивати та накопичувати популяцію макролофуса на томаті. Після інтродукції слід вдосталь годувати хижака збалансованим кормом МакФуд з розрахунку щонайменше 100 г/тиждень/га протягом 10-12 тижнів.

Макролофус контролює яйця та молоді личинки шкідника. За результатами спостережень агрономів кількох тепличних комбінатів, використання незидіокориса (Nesidiocoris tenuis) проти тути абсолюти дозволяє контролювати шкідника. Але в силу біологічних особливостей не рекомендується використовувати даного ентомофага, оскільки у нього менша пошукова здатність, ніж у макролофуса і незідіокоріс завдає шкоди молодим пагонам рослин і китицям. У південних регіонах зафіксовані випадки, коли незідіокоріс закріплювався навколо теплиці і повторно залітаючи шкодив томатам.

Нематода

Застосування ентомопатогенних нематод в боротьбі з тутою абсолютою

Є позитивний досвід застосування хижої нематоди штейнернеми фельтіа (Steinernema feltiae). Норми внесення вологої обробки 150000-200000 особин/м2/тиждень при 2000 л розчину/га. Нематода добре працює у прохолодну погоду, але потрібно підтримувати високу вологість. У спекотний період обробки проводилися в пізній час доби.

Бакуловирусы цыкл работы

Використання спеціального вірусу проти тути абсолюти

Дуже важливим інструментом у контролі тути абсолюти є використання бакуловірусу. Це видоспецифічний селективний грануловірус PhopGV, який контролює саме американську томатну мініуючу міль та картопляну міль. Продукт від швейцарської компанії Andermatt Biocontrol має назву Tutavir. Цей препарат отримав нагороду в Європі на IBMA.

Распостранения бакуло вируса по-гусенице

Норми внесення 100-200 мл/га. Вірус вражає личинок усіх стадій. Оскільки життєвий цикл шкідника здебільшого проходить у листі, то після виявлення перших поразок чи перших метеликів у феромонних пастках, слід застосовувати Тутавір щотижня. Вірус працює лише тоді, коли проковтується личинкою. Великою перевагою даного препарату є той факт, що до нього не виробляється резистентність у тути абсолюти. Вірус абсолютно безпечний для навколишнього середовища, людини, ентомофагів та джмелів. Тутавір можна використовувати як самостійно, так і у сумішах з іншими інсектицидами.

Важливо розуміти, що використання тільки одного інструменту для контролю Тут абсолюти не дасть вам бажаного результату – потрібно враховувати безліч факторів і особливостей вашої теплиці. Для розробки правильної та оптимальної стратегії захисту та додаткової інформації звертайтесь до наших технологів. 

Автор статті: Провідний спеціаліст компанії “Біо Захист”

Дохторук Андрій

Пошта: dam@bio-group.net

Телефон: +38 (093) 625 84 65

Феромони, феромонні пастки в технології боротьби з шкідниками

За оцінками, продуктивність сільського господарства повинна буде зрости на 70 % до 2050 року, щоб забезпечити продовольством зростаюче населення. Шкідники – серйозна проблема в сільському господарстві, для вирішення якої найчастіше використовується хімія. Проблема посилилася появою у шкідників стійкості до хімічних речовин. Тому багато хто активно переходять на IPM (інтегровану систему захисту).

Концепція IPM заснована на тому, що жоден єдиний підхід до боротьби зі шкідниками не забезпечує універсального рішення, найкращий захист може бути забезпечений комбінуванням різних підходів. Феромони є широко використовуваним компонентом багатьох програм боротьби зі шкідниками IPM.

Що таке феромони?

Феромони – це хімічні речовини, що виробляються і виділяються в навколишнє середовище комахами для спілкування з іншими представниками свого виду. Ці речовини, будучи засобами внутрішньопопуляційної регуляції, грають важливу роль в комунікації, в тому числі забезпечують зближення самців і самок в період розмноження.

Використання феромонів в боротьбі з комахами є екологічно чистим і широко використовуваним. Це нетоксичні, біорозкладні хімічні речовини, які використовуються для зміни поведінки певних комах і не впливають на інших комах і нецільові організми.

Прагнення оптимізувати захисні заходи і знизити негативні наслідки застосування інсектицидів змушує удосконалювати існуючі методи обліку шкідливих комах і сигналізації про терміни проведення захисних заходів. Для цієї мети підійдуть синтетичні аналоги феромонів комах, які можна використовувати в якості одного з найбільш економічних і  точних способів виявлення та оцінки щільності популяцій шкідників.

Грамотне і ефективне використання синтетичних феромонів можливо при знанні різних аспектів феромонної комунікації комах.

Комахи виділяють феромони, щоб попередити інших комах про таку інформацію, як стать комах, місцезнаходження, тривога та групування. Синтетичні феромони імітують хімічні речовини, що виробляються комахами і використовуються, крім усього іншого, для заманювання певних видів комах в спеціальні пастки. 

Феромони, що використовуються сьогодні, виробляються шляхом хімічного синтезу. Але проводиться безліч експериментів, які допоможуть синтезувати феромони за допомогою рослин і мікроорганізмів, що дозволяє значно знизити собівартість продукції і ціну на них. Мікроорганізми і рослини можуть забезпечити платформи для стійкого і комерційно життєздатного виробництва феромонів комах, але є проблеми, які необхідно подолати, перш ніж ця технологія буде готова до запуску на ринок.

Три способи використання феромонів

Існує три основних способи використання феромонів в боротьбі зі шкідниками:

  1. Моніторинг популяцій шкідників є найпоширенішим способом. Застосовується для визначення  наявності шкідника і необхідності обробки інсектицидами в залежності від кількості шкідника. Моніторинг може здійснюватися за допомогою візуального огляду, відбору проб або пасток. Жоден з  цих методів не є виключним, і їх можна використовувати разом, але більшість комерційно доступних варіантів засновані на пастках, як правило, з відповідним  приманка з феромонами.
  2. Масовий вилов для видалення великої кількості шкідників з популяції, що розвивається. Значне зниження щільності популяції шкідників сприяє захисту ресурсів.
  3.  Третій метод спрямований на дезорієнтацію комах під час спарювання, щоб зменшити майбутні популяції, і називається розладом спарювання.

Частка світового ринку сільськогосподарських феромонів за типами в 2019 році (88 % припадає на статеві феромони).

Фактори успішного використання феромонів

Багато факторів потенційно можуть вплинути на успіх програми моніторингу:

  •  Феромонні приманки. Виробники тиражують ці хімічні сполуки для використання в пастках, але точність тиражування безпосередньо впливає на успішність пастки. Тому важливо, щоб в феромонної приманці використовувалися якісні хімічні компоненти, а їх співвідношення відповідало натуральним. Ці міркування додатково ускладнюються типом і якістю використовуваного дозатора. Феромон буде поглинений будь-яким дозатором (гумовими пробками або пластиковими флаконами). Різні матеріали виділяють феромон з різною швидкістю, а неякісні матеріали містять забруднення, які можуть вступити в реакцію з феромоном, що серйозно впливає на експлуатаційні характеристики. Тому вкрай важливо використовувати якісну приманку для точного моніторингу.
  • Конструкція пастки. Тип використовуваної пастки залежить від поведінки комахи і використовуваного місця розташування. Тут потрібно виходити зі своїх даних, щоб вибрати оптимальний варіант з безлічі конструкцій пасток.
  • Колір феромонної пастки. Колір  пастки може істотно вплинути на приваблення деяких комах. Навіть якщо колір не має значення для передбачуваного шкідника, краще вибрати колір, менш привабливий для корисних комах.
  • Правильне розміщення феромонних пасток. Розміщення пасток може мати великий вплив на продуктивність. Рішення про початок обраної стратегії боротьби зі шкідниками зазвичай  приймається при досягненні порогу дій (або економічного), тобто певної кількості комах, що потрапили на кожну пастку протягом тижня. Вибір стратегії боротьби з шкідниками залежить від культури і шкідника.

Механізм дії феромонів

Феромон знаходиться в гумовому або пластиковому дозаторі і поміщається на пастку, самці, вловивши цей запах, летять на пастки, вважаючи, що це самки.

Дозатор феромонів – це пристрій, який повільно вивільняє феромон протягом певного періоду часу, зазвичай від 4 до 6 тижнів, і використовується для уловлювання комах.

Існує кілька механізмів дії, які порушують спаровування. Дозатори можуть імітувати феромони самки, залучаючи самця в пастки, а можуть виділяти стільки феромону, що фонова концентрація настільки велика, що самцям здається, що самка всюди.

Два способи зірвати спарювання комах

З комерційною доступністю статевих феромонів для деяких шкідників, вчені та підприємці звернули свою увагу на розлад спарювання як на «біораціональний» підхід до боротьби з комахами.

Розлад спарювання – це використання синтетичних статевих атрактантів для дезорієнтації самців і подальшого зменшення кількості запліднених яєць, відкладених самками.

Порушення спарювання відбувається при викиді синтетичних феромонів в повітря, де вони заважають самцям навіть в помірних кількостях знайти самок, порушуючи розмноження комах.

Порушення спаровування досягається двома основними способами:

  1. Помилковий слід – розміщення набагато більшої кількості феромонних точкових джерел, ніж передбачувана кількість самок. Імовірність того, що самець знайде самку в кінці феромонного сліду,  знижується, і самці, що йдуть по цих слідах, витрачають свою енергію на пошуки штучних джерел феромонів.
  2. Масовий вилов – зменшує кількість самців, що призводить до зміщення статевого співвідношення в бік самок і, як наслідок, відкладання незапліднених яєць.

Дезорієнтація у самців досягається концентрацією феромону в навколишньому середовищі, достатньою, щоб приховати сліди самок. До ефекту додається адаптація антенних рецепторів та/або звикання центральної нервової системи комахи. Специфічні рецепторні ділянки на вусиках реагують тільки на молекули феромонів. Коли рецепторний синапс постійно активується високою концентрація феромонів у навколишньому середовищі, електричний сигнал знижується. Рецепторна ділянка перестає реагувати, і комаха стає сліпою для навігації. Коли центральна нервова система комахи наповнюється сигналами з рецепторних ділянок, вона звикає і більше не може забезпечити спрямовану поведінку (комаха не може націлитися на будь-яке джерело феромонів і слідувати за партнером).

Існуючі комерційні феромони імітують природні хімічні феромони самок. Більшість статевих феромонів комах є багатокомпонентними з точним співвідношенням компонентів, які можуть бути дорогими у виробництві. Тому статеві феромони є комерційно доступними для комах, що мають господарське значення.

Три механізми контролю шкідників з використанням феромонів

Важливо розуміти, як працює процес порушення спарювання, так як різні механізми можуть впливати на використання феромонів. Існують різні механізми, які пояснюють, як працює розлад спарювання. Для одного виду шкідника одночасно можуть діяти кілька механізмів для досягнення контролю.

  1. Адаптація або звикання.  Тривалий вплив подразника може вплинути на органи чуттів або нервову систему комахи, тому вони не будуть функціонувати належним чином.
  2. Помилкові сліди – на відміну від звикання і адаптації, говорять про те, що самець все ще може відчувати і реагувати на феромон. Якщо розміщені численні джерела феромонів, самці будуть витрачати час і енергію на слідування за помилковими феромонними слідами, і  шанси знайти самку знижуються.
  3. Маскування – цей механізм також передбачає, що сенсорна система шкідника працює нормально. При цьому фоновий рівень феромонів високий і досить рівномірний, щоб замаскувати запах від самки. Звичайна навігаційна система самця для пошуку партнера марна в феромонному тумані.
феромон ізонет
Феромонні нитки Isonet проти Tuta absoluta

Одного лише порушення спарювання зазвичай недостатньо для зниження великих популяцій шкідників до безпечного рівня. Це в першу чергу задумано як тактика скорочення популяцій шкідників.

Феромонні пастки в IPM

Основне використання статевих феромонів полягає в заманюванні комах в пастки для виявлення і визначення часового розподілу. Самці реагують на статеві феромони. Тому пастки для приманок сконструйовані таким чином, щоб точно відтворити співвідношення хімічних компонентів і швидкість виділення феромонів самками.

Дизайн пасток має вирішальне значення для ефективного їх використання при моніторингові популяцій комах. Пастки розрізняються за конструкцією і розмірами в залежності від поведінки цільових комах. Організовані протоколи відлову необхідні для оцінки популяції, порогів обприскування та порівняння з року в рік. Інформація про пастки може бути дуже корисна для прийняття рішень про застосування інсектицидів або інших заходах боротьби. Пастки також можуть бути встановлені з метою вбивства самців для контролю над популяцією.

Приклади феромонних пасток

Феромон на клейовій основі
Синя клейова пастка з феромоном

Використання феромонних пасток від трипсів

Дослідження, проведені лабораторією доктора Роуз Буйтенхуіс у Вайнленді, показують, що відлов трипсів вище, коли для клейових пасток використовуються додаткові приманки. Ці приманки містять феромони, які приманюють трипсів. Позиціонуючись як вдосконалений інструмент моніторингу, приманки можуть бути використані для поліпшення масового відлову. Результати даного дослідження активно використовуються на практиці як комплексний підхід до захисту від шкідників. 

Лов трипсів на клейові пастки

На пастках, що включають феромони, було спіймано в 2 рази більше трипсів (графік R. Buitenhuis).

Звертаючи увагу на колір, розміщення і щільність пасток, а також розглядаючи можливість додавання феромонів, можна максимально збільшити кількість відловлених трипсів, що дозволить краще контролювати ситуацію в теплиці.

Деякі виробники включали в свої рулонні пастки феромони від шкідників (на даний момент список таких пасток ще не дуже великий), поєднуючи це з обраним колірним спектром для конкретного шкідника. Так, на прикладі трипсів з використанням феромонів на синіх пастках, що є найбільш привабливим для цього шкідника, випробування показали, що вилов трипсів збільшився на 30-100 %.

Проблеми, які вирішують феромони

Отже, феромонні пастки допомагають вирішити відразу кілька завдань:

  • виявлення ранніх заражень шкідниками, таких як перша поява мігруючих шкідників;
  • визначення зон зараження шкідниками;
  • відстеження динаміки поширення та зростання популяції шкідників;
  • допомога у прийнятті рішень щодо боротьби з комахами-шкідниками;
  • скорочення популяції шкідників.

Феромони в першу чергу порушують процес спарювання, так як самці не знаходять самок і процес спарювання не відбувається.

На даний момент виявлені і синтезовані феромони для безлічі різних комах як для відкритого, так і для закритого грунту.

Ознайомитися зі списком феромонів і феромонних пасток можна тут, на сайті. Щоб отримати рекомендації щодо застосування феромонів і пасток, зв’яжіться з менеджерами, залишивши заявку у формі сайту. 

Автор статті: технолог із захисту рослин Компанії «Біо Захист»

Руденко Вероніка

Пошта: rvv@bio-group.net

Телефон: +38 067 416 77 70

Тута абсолюта – грізний шкідник томатів

Загальний опис шкідника Тута абсолюта

Тута абсолюта – це головний шкідник польових та тепличних томатів, належить сімейству Gelechiidae (молі виїмчастокрилі). Це олігофаг, який харчується переважно пасльоновими культурами. Основною рослиною-господарем є томат, може поселитися на культурах: баклажан, картопля, солодкий перець і тютюн так само добре, як і на бур’янах типу Datura stramonium (дурман звичайний) та Lycium chilense (дереза) та Solanum nigrum (Паслін чорний).

Тута абсолюта родом із Перу, широко поширилася в Північній Африці. Нещодавно вона потрапила на інші континенти. Вперше була виявлена в Іспанії в 2007 р., через рік у Марокко та Алжирі, до кінця 2008 р. знайдено на томатах у Південній Франції, Італії та Тунісі. На даний момент це один із найсерйозніших шкідників томатів у Середземноморському басейні та теплих регіонах Європи. Тим часом Т.абсолюта перейшла до середину Сходу, Індію та Бангладеш, Північну та на південь від Сахари Африку, Центральну Америку та більшість країн Європи та в Україну.

Розвиток популяції Тута абсолюта

Низький поріг розвитку Т. абсолюти знаходиться між 7 та 9 ℃. Плодючість залежить значною мірою від рослин – господарів або сорту, на одну самку припадає до 260 яєць. У Південній Америці може бути 10 – 12 поколінь на рік. В умовах Середземномор’я доросла Т.абсолюта може бути виявлена ​​цілий рік, у літній період її чисельність найвища.

Ознаки пошкоджень томатів шкідником Тута абсолюта

Найпомітніші симптоми – це плямистоподібні міни на листках. Гусениці надають перевагу листям і стеблам, але вони можуть також зустрічатися всередині плода. На листі личинки харчуються лише мезофільними тканинами, залишаючи непошкодженим епідерміс. На плодах вони з’являються в міру їхнього формування, але харчуються тільки зеленими плодами. У разі серйозної інфекції листя гине повністю. Пошкодження плода можуть супроводжувати грибкові захворювання, що призводять до загнивання до збирання врожаю.

Життєвий цикл та поява Тута абсолюта

Самка відкладає близько 260 циліндричних яєць переважно на нижній стороні листа або на стеблах, меншою мірою на плодах. Перша личинкова стадія від білого до жовтуватого відтінків невдовзі після появи, невелика, розміром 0,5 мм. Мінуються всередині листя, меншою мірою на стеблах та фруктах. Від другої личинкової стадії до четвертої вони зеленіють і набувають чорної смужки поруч із головою. Цілком сформована личинка знаходиться в межах до 9 мм. Зазвичай вона проходить 4 стадії. Між линяннями гусениці тимчасово можуть влаштуватися за межами міни. Лялечки часто зустрічаються в ґрунті, на поверхні листа, на скрученому листі або в міні. При залишенні міни утворюють шовковий кокон на молодому листі або ґрунті. Спочатку лялечка зеленого відтінку, згодом набуває кольору лісового горіха та  стає темно-коричневою при наближенні до появи дорослої особини. Доросла особина міль близько 6-7 мм завдовжки з розмахом крил 10 мм. Вони сіро-коричневі з ниткоподібними вусиками зі світлими і темними сегментами, що чергуються. Чорні плями є на передніх крилах. Дорослі особини ведуть нічний спосіб життя і зазвичай ховаються між листям протягом дня.

Життєвий цикл розвитку Тута абсолюта
Різниця між пошкодженнями мінуючимі мухами (Liriomyza) і південно-американською томатною мілю (Tuta absoluta)

Рекомендації по боротьбі з Тутою абсолютою

Дози внесення за ступенем зараження

Латина біоагентаПрофілактикаДоза внесення за ступенем зараження
низькасереднявисока
Trapline ZENTINEL 454 шт./1 Га/45 днів40 шт./1 Га/30 днів
Macrolophus pygmaeus0,25 шт./м21 шт./м22 шт./м23 шт./м2
Habrobracon hebetor0,25 шт./м21 шт./м23 шт./м29 шт./м2
Nesidiocoris tenuis——1 шт./м22 шт./м2
Podisus nigrisinus——1 шт./м22 шт./м2
Періодичність внесення1 раз на місяцьчерез тижденьщотижнящотижня
Trichogramma spp.10 грам/1 га50 грам/1 га100 грам/1 га—
Періодичність внесеннящотижнящотижнякожні 3-4 днікожні 3-4 дні

Для контролю Тути абсолюти переважно застосовують хижого клопа – макролофуса. Докладніше про стратегію контролю шкідника можете дізнатися за контактами, вказаними на сайті.

Агроном – технолог
Дохторук Андрій
+ 38 093 625 84 65